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小鼠诱导性多能干细胞移植治疗感音神经性耳聋的实验研究

摘要第3-5页
ABSTRACT第5-7页
中英文缩略词表第10-11页
第1章 引言第11-14页
第2章 材料与方法第14-30页
    2.1 实验材料第14-18页
        2.1.1 实验细胞与实验动物第14页
        2.1.2 实验试剂第14-16页
        2.1.3 实验主要培养液的配制第16-17页
        2.1.4 实验仪器和实验耗材第17-18页
    2.2 实验方法第18-29页
        2.2.1 实验器材的准备与实验分组第18-19页
        2.2.2 原代MEF的制备、培养与冻存第19-20页
        2.2.3 MEF的复苏、传代和饲养层细胞的制备第20-21页
        2.2.4 小鼠iPSCs的复苏、传代与冻存第21-22页
        2.2.5 小鼠iPSCs的鉴定第22-24页
        2.2.6 小鼠iPSCs的分离及CM-Di1的标记第24页
        2.2.7 小鼠感音神经性耳聋模型的制作第24页
        2.2.8 术前及术后小鼠ABR检测第24-25页
        2.2.9 耳蜗内移植CM-Di1标记的小鼠iPSCs第25页
        2.2.10 耳蜗的免疫学检测第25-26页
        2.2.11 耳蜗的基因学检测第26-28页
        2.2.12 移植后耳蜗的HE染色第28-29页
    2.3 实验数据的统计分析第29-30页
第3章 结果第30-43页
    3.1 原代MEF的形态及饲养层细胞的特点第30页
    3.2 小鼠iPSCs的形态及生长特点第30-31页
    3.3 小鼠iPSCs的多能性检测结果第31-32页
    3.4 CM-Di1标记小鼠iPSCs第32页
    3.5 ABR检测结果及分析第32-35页
    3.6 iPSCs在小鼠耳蜗内的分化表达情况第35-42页
        3.6.1 耳蜗毛细胞标志物(Myosin7a、Math1、Calretinin)免疫荧光染色结果第35-38页
        3.6.2 耳蜗螺旋神经元标志物( Nestin、Neurofliment Medium、Tubulinβ-Ⅲ)免疫荧光染色结果第38-41页
        3.6.3 RT-PCR检测耳蜗毛细胞及螺旋神经元相关基因的表达情况第41-42页
    3.7 HE染色鉴定小鼠iPSCs耳蜗内移植后的成瘤性第42-43页
第4章 讨论第43-46页
第5章 结论第46-47页
致谢第47-48页
参考文献第48-52页
攻读学位期间的研究成果第52-53页
综述第53-59页
    参考文献第58-59页

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