| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 中英文缩略词表 | 第10-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-14页 |
| 第2章 材料与方法 | 第14-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第14-18页 |
| 2.1.1 实验细胞与实验动物 | 第14页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第14-16页 |
| 2.1.3 实验主要培养液的配制 | 第16-17页 |
| 2.1.4 实验仪器和实验耗材 | 第17-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-29页 |
| 2.2.1 实验器材的准备与实验分组 | 第18-19页 |
| 2.2.2 原代MEF的制备、培养与冻存 | 第19-20页 |
| 2.2.3 MEF的复苏、传代和饲养层细胞的制备 | 第20-21页 |
| 2.2.4 小鼠iPSCs的复苏、传代与冻存 | 第21-22页 |
| 2.2.5 小鼠iPSCs的鉴定 | 第22-24页 |
| 2.2.6 小鼠iPSCs的分离及CM-Di1的标记 | 第24页 |
| 2.2.7 小鼠感音神经性耳聋模型的制作 | 第24页 |
| 2.2.8 术前及术后小鼠ABR检测 | 第24-25页 |
| 2.2.9 耳蜗内移植CM-Di1标记的小鼠iPSCs | 第25页 |
| 2.2.10 耳蜗的免疫学检测 | 第25-26页 |
| 2.2.11 耳蜗的基因学检测 | 第26-28页 |
| 2.2.12 移植后耳蜗的HE染色 | 第28-29页 |
| 2.3 实验数据的统计分析 | 第29-30页 |
| 第3章 结果 | 第30-43页 |
| 3.1 原代MEF的形态及饲养层细胞的特点 | 第30页 |
| 3.2 小鼠iPSCs的形态及生长特点 | 第30-31页 |
| 3.3 小鼠iPSCs的多能性检测结果 | 第31-32页 |
| 3.4 CM-Di1标记小鼠iPSCs | 第32页 |
| 3.5 ABR检测结果及分析 | 第32-35页 |
| 3.6 iPSCs在小鼠耳蜗内的分化表达情况 | 第35-42页 |
| 3.6.1 耳蜗毛细胞标志物（Myosin7a、Math1、Calretinin）免疫荧光染色结果 | 第35-38页 |
| 3.6.2 耳蜗螺旋神经元标志物（ Nestin、Neurofliment Medium、Tubulinβ-Ⅲ）免疫荧光染色结果 | 第38-41页 |
| 3.6.3 RT-PCR检测耳蜗毛细胞及螺旋神经元相关基因的表达情况 | 第41-42页 |
| 3.7 HE染色鉴定小鼠iPSCs耳蜗内移植后的成瘤性 | 第42-43页 |
| 第4章 讨论 | 第43-46页 |
| 第5章 结论 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第52-53页 |
| 综述 | 第53-59页 |
| 参考文献 | 第58-59页 |
