| 致谢 | 第10-11页 |
| 摘要 | 第11-13页 |
| Abstract | 第13-14页 |
| 缩略词 | 第15-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-29页 |
| 1.1 引言 | 第16页 |
| 1.2 植物侧根的发育以及调控机制 | 第16-21页 |
| 1.2.1 植物侧根原基发育过程 | 第16-19页 |
| 1.2.2 植物侧根发育的调控机制 | 第19-21页 |
| 1.3 温度对侧根发育的影响 | 第21-22页 |
| 1.4 活性氧(ROS)影响侧根的发育 | 第22-23页 |
| 1.5 其他因素对植物侧根生长发育的影响 | 第23-26页 |
| 1.5.1 矿质营养与侧根形成 | 第23-25页 |
| 1.5.2 糖与侧根的形成 | 第25页 |
| 1.5.3 光照与侧根形成 | 第25页 |
| 1.5.4 水分与侧根形成 | 第25-26页 |
| 1.6 基因芯片技术原理及在植物研究中的应用 | 第26-28页 |
| 1.6.1 基因芯片的原理 | 第26页 |
| 1.6.2 基因芯片在植物研究中的应用 | 第26-28页 |
| 1.7 本研究的目的和意义 | 第28-29页 |
| 第二章 突变体表型分析 | 第29-34页 |
| 2.1 材料 | 第29页 |
| 2.2 方法 | 第29-30页 |
| 2.2.1 水稻的溶液培养 | 第29页 |
| 2.2.2 水稻生长条件 | 第29页 |
| 2.2.3 突变体表型分析 | 第29-30页 |
| 2.2.4 水稻侧根原基的观察 | 第30页 |
| 2.2.5 根部组织细胞形态观察 | 第30页 |
| 2.3 实验结果与分析 | 第30-34页 |
| 2.3.1 突变体表型观察 | 第30-32页 |
| 2.3.2 根系参数分析 | 第32页 |
| 2.3.3 侧根原基的观察 | 第32-33页 |
| 2.3.4 突变体与野生型根部细胞形态观察 | 第33-34页 |
| 第三章 突变体与野生型根尖差异基因表达谱分析 | 第34-47页 |
| 3.1 材料 | 第34页 |
| 3.2 方法 | 第34-39页 |
| 3.2.1 水稻总RNA的提取 | 第34-35页 |
| 3.2.2 基因芯片杂交 | 第35-38页 |
| 3.2.3 RNA反转录 | 第38页 |
| 3.2.4 定量RT-PCR(qRT-PCR) | 第38-39页 |
| 3.3 实验结果与分析 | 第39-47页 |
| 3.3.1 基因芯片的质量控制 | 第39页 |
| 3.3.3 基因芯片准确性验证 | 第39-41页 |
| 3.3.4 突变体与野生型基因表达谱分析 | 第41-47页 |
| 第四章 突变体与野生型根尖活性氧水平检测 | 第47-55页 |
| 4.1 材料 | 第47页 |
| 4.2 方法 | 第47-48页 |
| 4.2.1 RNA提取、qRT-PCR | 第47页 |
| 4.2.2 ROS含量测定 | 第47页 |
| 4.2.3 考马斯亮蓝染色法测定蛋白含量(Bradford法) | 第47-48页 |
| 4.2.4 过氧化氢(H_2O_2)染色 | 第48页 |
| 4.2.5 超氧基(O_2~(·-))染色 | 第48页 |
| 4.3 实验结果 | 第48-55页 |
| 4.3.1 过氧化物酶的表达 | 第48-50页 |
| 4.3.2 活性氧含量测定 | 第50页 |
| 4.3.3 过氧化氢(H_2O_2)染色 | 第50-52页 |
| 4.3.4 超氧基(O_2~(·-))的染色 | 第52-53页 |
| 4.3.5 根尖生长素输出载体的表达变化 | 第53-55页 |
| 第五章 讨论 | 第55-58页 |
| 5.1 24℃条件下活性氧的含量或者分布差异可能导致突变体lts1侧根缺失和根长变短 | 第55-56页 |
| 5.2 24℃条件下OsPIN家族成员的表达差异可能影响lts1根尖生长素梯度的建立 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-64页 |
| 附件 | 第64-68页 |
