| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第14-28页 |
| 1.1 玫瑰及其应用 | 第14-16页 |
| 1.1.1 观赏和绿化价值 | 第14-15页 |
| 1.1.2 食用价值 | 第15-16页 |
| 1.1.3 工业原料 | 第16页 |
| 1.2 干旱胁迫对植物的影响 | 第16-19页 |
| 1.2.1 干旱胁迫对植物光合作用的影响 | 第17页 |
| 1.2.2 干旱胁迫对植物渗透调节的影响 | 第17-18页 |
| 1.2.3 干旱胁迫对植物活性氧代谢的影响 | 第18页 |
| 1.2.4 干旱胁迫对植物激素的影响 | 第18-19页 |
| 1.3 低温胁迫对植物的影响 | 第19-21页 |
| 1.3.1 低温胁迫对植物形态结构的影响 | 第19-20页 |
| 1.3.2 低温胁迫对植物抗氧化系统的影响 | 第20页 |
| 1.3.3 低温胁迫对植物可溶性蛋白、丙二醛及光合作用的影响 | 第20-21页 |
| 1.4 植物抗氧化酶系统 | 第21-25页 |
| 1.4.1 超氧化物歧化酶(Superoxidedismutase,SOD) | 第22-23页 |
| 1.4.2 过氧化物酶(Peroxidase,POD) | 第23页 |
| 1.4.3 抗坏血酸过氧化物酶(Ascorbateperoxidase,APX) | 第23-24页 |
| 1.4.4 过氧化氢酶(Hydrogenperoxide,CAT) | 第24页 |
| 1.4.5 谷胱甘肽还原酶(Glutathionereductase,GR) | 第24-25页 |
| 1.5 植物超氧化物歧化酶基因工程研究 | 第25-26页 |
| 1.6 研究的目的及意义 | 第26页 |
| 1.7 研究内容与创新点 | 第26-27页 |
| 1.7.1 研究内容 | 第26-27页 |
| 1.7.2 创新点 | 第27页 |
| 1.8 研究技术方案 | 第27-28页 |
| 第二章 不同玫瑰品种对干旱胁迫的生理生化反应与综合评价 | 第28-46页 |
| 2.1 试验材料与方法 | 第28页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第28页 |
| 2.1.2 试验设计 | 第28页 |
| 2.2 指标的测定与计算 | 第28-32页 |
| 2.2.1 干旱胁迫下玫瑰形态变化 | 第28-29页 |
| 2.2.2 相对含水量的测定 | 第29页 |
| 2.2.3 可溶性蛋白含量的测定 | 第29页 |
| 2.2.4 丙二醛(MDA)含量的测定 | 第29页 |
| 2.2.5 超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第29-30页 |
| 2.2.6 过氧化物酶(POD)活性的测定 | 第30-31页 |
| 2.2.7 过氧化氢酶(CAT)活性的测定 | 第31页 |
| 2.2.8 抗坏血酸过氧化物酶(APX)活性测定 | 第31-32页 |
| 2.2.9 谷胱甘肽还原酶(GR)活性测定 | 第32页 |
| 2.3 数据分析 | 第32-33页 |
| 2.4 结果与分析 | 第33-42页 |
| 2.4.1 干旱胁迫对三种玫瑰形态外观变化与相对含水量的影响 | 第33-36页 |
| 2.4.2 干旱胁迫对玫瑰花瓣可溶性蛋白和丙二醛(MDA)含量的影响 | 第36-38页 |
| 2.4.3 干旱胁迫对玫瑰花花瓣超氧化物歧化酶(SOD)活性的影响 | 第38页 |
| 2.4.4 干旱胁迫对玫瑰花过氧化氢酶(CAT)的影响 | 第38-39页 |
| 2.4.5 干旱胁迫对玫瑰花过氧化物酶(POD)活性的影响 | 第39-40页 |
| 2.4.6 干旱胁迫对谷胱甘肽还原酶(GR)的影响 | 第40-41页 |
| 2.4.7 干旱胁迫对抗坏血酸过氧化物酶(APX)的影响 | 第41-42页 |
| 2.5 三种玫瑰抗旱性综合评价 | 第42-43页 |
| 2.6 讨论 | 第43-46页 |
| 第三章 4℃低温处理对玫瑰抗氧化酶活性变化的研究 | 第46-58页 |
| 3.1 试验材料与方法 | 第46-47页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第46页 |
| 3.1.2 试验设计 | 第46-47页 |
| 3.2 指标的测定与计算 | 第47页 |
| 3.3 数据分析 | 第47页 |
| 3.4 结果与分析 | 第47-55页 |
| 3.4.1 4 ℃低温对三种玫瑰形态外观的影响 | 第47-49页 |
| 3.4.2 4 ℃低温对三种玫瑰可溶性蛋白含量和丙二醛(MDA)含量影响 | 第49-51页 |
| 3.4.3 4 ℃低温对玫瑰花超氧化物歧化酶(SOD)活性的影响 | 第51页 |
| 3.4.4 4 ℃低温对玫瑰花过氧化氢酶(CAT)活性的影响 | 第51-52页 |
| 3.4.5 4 ℃低温对玫瑰花过氧化物酶活性(POD)的影响 | 第52-53页 |
| 3.4.6 4 ℃低温对玫瑰花谷胱甘肽还原酶(GR)的影响 | 第53-54页 |
| 3.4.7 4 ℃低温对玫瑰花抗坏血酸过氧化物酶(APX)的影响 | 第54-55页 |
| 3.5 三种玫瑰低温适应性综合评价 | 第55-56页 |
| 3.6 讨论 | 第56-58页 |
| 第四章 4℃低温处理下玫瑰SOD基因表达分析 | 第58-68页 |
| 4.1 试验材料与仪器 | 第58-59页 |
| 4.1.1 主要实验试剂 | 第58页 |
| 4.1.2 主要实验仪器 | 第58页 |
| 4.1.3 试验材料 | 第58页 |
| 4.1.4 试验设计 | 第58-59页 |
| 4.2 试验方法 | 第59-61页 |
| 4.2.1 RNA提取 | 第59页 |
| 4.2.2 反转录 | 第59-60页 |
| 4.2.3 荧光定量real-timePCR分析 | 第60-61页 |
| 4.3 数据预处理 | 第61页 |
| 4.4 数据计算 | 第61-62页 |
| 4.5 结果 | 第62-65页 |
| 4.5.1 4 ℃低温处理下RhCu/ZnSOD1、RhCu/ZnSOD2、RhCu/ZnSOD3表达分析. | 第62-63页 |
| 4.5.2 4 ℃低温处理下FeSOD1基因表达分析 | 第63-64页 |
| 4.5.3 4 ℃低温处理下MnSOD基因表达分析 | 第64-65页 |
| 4.6 讨论 | 第65-68页 |
| 第五章 结论与展望 | 第68-70页 |
| 5.1 结论 | 第68页 |
| 5.2 展望 | 第68-69页 |
| 5.3 存在问题 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-82页 |
| 附录(攻读硕士学位期间科研成果) | 第82页 |
