| 中文摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第15-41页 |
| 1.1 引言 | 第15-16页 |
| 1.2 硅纳米材料简介 | 第16-19页 |
| 1.3 荧光硅纳米颗粒研究进展 | 第19-31页 |
| 1.3.1 荧光硅纳米颗粒主要制备方法 | 第19-24页 |
| 1.3.2 荧光硅纳米颗粒用于生物成像分析 | 第24-26页 |
| 1.3.3 荧光硅纳米颗粒在癌症治疗中的应用 | 第26-28页 |
| 1.3.4 荧光硅纳米颗粒生物安全性评价 | 第28-31页 |
| 1.4 本文的研究意义及主要研究内容 | 第31-33页 |
| 1.4.1 立题依据及意义 | 第31页 |
| 1.4.2 主要研究内容 | 第31-33页 |
| 参考文献 | 第33-41页 |
| 第二章 基于荧光硅纳米颗粒基因载体构建及其细胞行为学可视化研究 | 第41-80页 |
| 2.1 前言 | 第41-43页 |
| 2.2 实验部分 | 第43-53页 |
| 2.2.1 实验所用试剂 | 第43-45页 |
| 2.2.2 实验所用仪器和生产厂家 | 第45-46页 |
| 2.2.3 荧光硅纳米颗粒的制备 | 第46页 |
| 2.2.4 基于荧光硅纳米颗粒-鱼精蛋白复合基因载体的构建与表征 | 第46-47页 |
| 2.2.5 质粒DNA分离与提取 | 第47-48页 |
| 2.2.6 质粒DNA吸附效率测定 | 第48-49页 |
| 2.2.7 脱氧核糖核酸酶I保护分析 | 第49-50页 |
| 2.2.8 细胞培养 | 第50页 |
| 2.2.9 细胞转染 | 第50-51页 |
| 2.2.10 毒性评估 | 第51页 |
| 2.2.11 细胞内吞 | 第51-52页 |
| 2.2.12 细胞内吞机制 | 第52页 |
| 2.2.13 细胞内分布 | 第52-53页 |
| 2.2.14 细胞内解离 | 第53页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第53-75页 |
| 2.3.1 基于荧光硅纳米颗粒-鱼精蛋白复合基因载体的构建与表征 | 第53-56页 |
| 2.3.2 基因载体对质粒吸附效率及保护 | 第56-60页 |
| 2.3.3 细胞摄入动力学及内吞机制研究 | 第60-64页 |
| 2.3.4 细胞内亚细胞器定位 | 第64-67页 |
| 2.3.5 细胞内解离行为 | 第67-69页 |
| 2.3.6 转染效率及毒性评估 | 第69-75页 |
| 2.4 结论 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-80页 |
| 第三章 荧光抗癌硅纳米颗粒的制备及其在肿瘤诊疗中的应用 | 第80-127页 |
| 3.1 前言 | 第80-82页 |
| 3.2 实验部分 | 第82-90页 |
| 3.2.1 实验所用试剂 | 第82-84页 |
| 3.2.2 实验所用仪器和生产厂家 | 第84-85页 |
| 3.2.3 荧光抗癌硅纳米颗粒的制备 | 第85页 |
| 3.2.4 荧光抗癌硅纳米颗粒的表征 | 第85-86页 |
| 3.2.5 光学稳定性 | 第86页 |
| 3.2.6 细胞毒性评估 | 第86-87页 |
| 3.2.7 细胞内ROS测定 | 第87页 |
| 3.2.8 细胞免疫荧光成像 | 第87-88页 |
| 3.2.9 活体实验 | 第88页 |
| 3.2.10 冰冻切片 | 第88页 |
| 3.2.11 组织学检查 | 第88-90页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第90-122页 |
| 3.3.1 荧光硅纳米颗粒合成机制 | 第90-91页 |
| 3.3.2 荧光抗癌硅纳米颗粒的制备与纯化 | 第91-94页 |
| 3.3.3 荧光抗癌硅纳米颗粒电镜及表面基团表征 | 第94-98页 |
| 3.3.4 荧光抗癌硅纳米颗粒光学性质 | 第98-105页 |
| 3.3.5 荧光抗癌硅纳米颗粒定量方法 | 第105-107页 |
| 3.3.6 荧光抗癌硅纳米颗粒选择性抑制癌细胞生长 | 第107-110页 |
| 3.3.7 荧光抗癌硅纳米颗粒诱导细胞内产生ROS | 第110-112页 |
| 3.3.8 荧光抗癌硅纳米颗粒选择性诱导癌细胞骨架改变 | 第112-115页 |
| 3.3.9 肿瘤成像及治疗 | 第115-122页 |
| 3.4 结论 | 第122-123页 |
| 参考文献 | 第123-127页 |
| 第四章 基于荧光硅纳米颗粒探针的前哨淋巴结显影与切除 | 第127-178页 |
| 4.1 前言 | 第127-129页 |
| 4.2 实验部分 | 第129-138页 |
| 4.2.1 实验所用试剂 | 第129页 |
| 4.2.2 实验所用仪器和生产厂家 | 第129-130页 |
| 4.2.3 荧光硅纳米颗粒的制备 | 第130-131页 |
| 4.2.4 荧光硅纳米颗粒的表征 | 第131页 |
| 4.2.5 测定荧光硅纳米颗粒量子效率 | 第131页 |
| 4.2.6 动物实验声明 | 第131-132页 |
| 4.2.7 大鼠和兔饲养方法 | 第132页 |
| 4.2.8 荧光硅纳米颗粒对淋巴结显影准确性考察 | 第132-133页 |
| 4.2.9 荧光硅纳米颗粒对淋巴结显影适宜浓度 | 第133页 |
| 4.2.10 荧光硅纳米颗粒和吲哚菁绿光学性质的对比 | 第133-134页 |
| 4.2.11 荧光硅纳米颗粒和吲哚菁绿在淋巴结内滞留时间的对比 | 第134页 |
| 4.2.12 大鼠腘窝和腋窝淋巴结实时显影 | 第134-135页 |
| 4.2.13 兔腘窝淋巴结实时显影 | 第135-136页 |
| 4.2.14 灵长类动物来源 | 第136页 |
| 4.2.15 灵长类动物饲养和管理 | 第136-137页 |
| 4.2.16 灵长类动物前哨淋巴结实时显影 | 第137页 |
| 4.2.17 组织学检查 | 第137-138页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第138-174页 |
| 4.3.1 荧光硅纳米颗粒表征 | 第138-139页 |
| 4.3.2 荧光硅纳米颗粒对淋巴结显影准确性和最适浓度 | 第139-144页 |
| 4.3.3 荧光硅纳米颗粒和吲哚菁绿对淋巴结显影方式的对比 | 第144-148页 |
| 4.3.4 荧光硅纳米颗粒和吲哚菁绿光学性质的对比 | 第148-151页 |
| 4.3.5 荧光硅纳米颗粒和吲哚菁绿在淋巴结内滞留时间的对比 | 第151-157页 |
| 4.3.6 系统比较荧光硅纳米颗粒和吲哚菁绿 | 第157-158页 |
| 4.3.7 大鼠腘窝和腋窝淋巴结实时显影 | 第158-165页 |
| 4.3.8 兔腘窝淋巴结实时显影 | 第165-169页 |
| 4.3.9 灵长类动物前哨淋巴结实时显影及术后观察 | 第169-174页 |
| 4.4 结论 | 第174页 |
| 参考文献 | 第174-178页 |
| 第五章 荧光硅纳米颗粒的活体毒性评价 | 第178-205页 |
| 5.1 前言 | 第178-179页 |
| 5.2 实验部分 | 第179-187页 |
| 5.2.1 实验所用试剂 | 第179-180页 |
| 5.2.2 实验所用仪器和生产厂家 | 第180-181页 |
| 5.2.3 荧光硅纳米颗粒的制备 | 第181页 |
| 5.2.4 荧光硅纳米颗粒的表征 | 第181-182页 |
| 5.2.5 细胞培养 | 第182-183页 |
| 5.2.6 细胞毒性测试 | 第183页 |
| 5.2.7 活体荧光分布 | 第183-184页 |
| 5.2.8 组织学检查 | 第184-186页 |
| 5.2.9 血细胞常规和血清生化检查 | 第186-187页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第187-203页 |
| 5.3.1 细胞毒性 | 第187-190页 |
| 5.3.2 荧光硅纳米颗粒在大鼠体内生物分布、代谢途径和活体毒性考察 | 第190-195页 |
| 5.3.3 兔血清生化测试及组织学考察 | 第195-198页 |
| 5.3.4 灵长类动物血细胞常规、血清生化分析及组织学考察 | 第198-203页 |
| 5.4 结论 | 第203页 |
| 参考文献 | 第203-205页 |
| 第六章 总结与展望 | 第205-209页 |
| 6.1 全文总结 | 第205-206页 |
| 6.2 论文的创新点、重要性及不足之处 | 第206-207页 |
| 6.3 研究展望 | 第207-209页 |
| 攻读博士学位期间已完成或已发表的论文 | 第209-211页 |
| 致谢 | 第211-212页 |
