摘要 | 第2-3页 |
Abstract | 第3-4页 |
引言 | 第7-9页 |
材料和方法 | 第9-17页 |
1 材料试剂及主要仪器设备 | 第9-10页 |
1.1 细胞来源 | 第9页 |
1.2 试剂及耗材 | 第9页 |
1.3 实验仪器 | 第9页 |
1.4 常用实验试剂配置 | 第9页 |
1.5 细胞培养方法及步骤 | 第9-10页 |
2 细胞接种、转染及分组 | 第10-11页 |
2.1 实验试剂 | 第10页 |
2.2 实验器材 | 第10页 |
2.3 常用液体配置 | 第10页 |
2.4 细胞接种、转染miR-181b及分组 | 第10-11页 |
3 透射电镜 | 第11页 |
3.1 实验试剂 | 第11页 |
3.2 操作步骤 | 第11页 |
4 MTT法检测细胞活力 | 第11-12页 |
4.1 实验试剂 | 第11页 |
4.2 实验仪器 | 第11页 |
4.3 操作步骤 | 第11-12页 |
5 实时定量PCR检测miR-181b的水平 | 第12-14页 |
5.1 实验试剂 | 第12页 |
5.2 实验仪器 | 第12页 |
5.3 PCR引物 | 第12-13页 |
5.4 操作步骤 | 第13-14页 |
6 Western blot法检测AKT /p-AKT、p-P70S6K/P70S6K蛋白的水平 | 第14-16页 |
6.1 实验试剂 | 第14页 |
6.2 实验仪器 | 第14页 |
6.3 抗体 | 第14页 |
6.4 常用溶液配置 | 第14-15页 |
6.5 蛋白提取和定量检测 | 第15-16页 |
7 统计学处理 | 第16-17页 |
结果 | 第17-24页 |
1 Aβ25–35 处理的PC12细胞存活率下降 | 第17页 |
2 Aβ25–35 处理的PC12细胞自噬增强 | 第17-18页 |
3 Aβ25-35 处理的PC12细胞中Mi R-181b表达下调 | 第18-19页 |
4 miR-181b对Aβ25-35 处理的PC12自噬的影响 | 第19-22页 |
5 miR-181b可能是以m TOR依赖的方式调控Aβ25-35 诱导的自噬过程 | 第22-24页 |
讨论 | 第24-27页 |
结论 | 第27-28页 |
参考文献 | 第28-33页 |
综述 | 第33-43页 |
综述参考文献 | 第38-43页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第43-44页 |
缩略词表 | 第44-45页 |
致谢 | 第45-46页 |