| 摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 专业名词缩写中英文对照表 | 第14-15页 |
| 1. 前言 | 第15-17页 |
| 2. 材料与方法 | 第17-30页 |
| 2.1 试剂与仪器 | 第17-19页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第17-18页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第19页 |
| 2.1.4 实验细胞株 | 第19页 |
| 2.2 方法 | 第19-29页 |
| 2.2.1 动物造模及分组 | 第19-20页 |
| 2.2.2 神经学功能评分及TTC染色 | 第20页 |
| 2.2.3 组织学检测 | 第20-22页 |
| 2.2.4 组织Caspase-3活性检测 | 第22页 |
| 2.2.5 脑组织中H_2O_2含量的测定 | 第22-23页 |
| 2.2.6 RNA的提取 | 第23页 |
| 2.2.7 RNA逆转录 | 第23-24页 |
| 2.2.8 Real-time PCR | 第24页 |
| 2.2.9 脑组织蛋白的提取 | 第24-25页 |
| 2.2.10 蛋白表达检测 | 第25-26页 |
| 2.2.11 细胞低氧无糖/复氧(OGD/R)造模及分组 | 第26页 |
| 2.2.12 细胞凋亡Hoechst染色 | 第26-27页 |
| 2.2.13 乳酸脱氢酶(LDH)细胞毒性检测 | 第27-28页 |
| 2.2.14 细胞中NADPH氧化酶活性检测 | 第28-29页 |
| 2.2.15 细胞中H_2O_2水平检测 | 第29页 |
| 2.3 统计学分析 | 第29-30页 |
| 3. 结果 | 第30-42页 |
| 3.1 丹参多酚酸盐对脑缺血/再灌注损伤保护作用的量效关系 | 第30页 |
| 3.1.1 大鼠神经学功能评分和死亡率 | 第30页 |
| 3.1.2 大鼠脑梗死体积 | 第30页 |
| 3.2 丹参多酚酸盐对脑缺血/再灌注损伤保护作用的机制 | 第30-32页 |
| 3.2.1 大鼠神经学功能评分和死亡率 | 第30页 |
| 3.2.2 大鼠脑梗死体积 | 第30-31页 |
| 3.2.3 脑组织病理变化 | 第31页 |
| 3.2.4 脑组织TUNEL染色阳性率和Caspase-3活性变化 | 第31页 |
| 3.2.5 脑组织NOX的mRNA和蛋白表达 | 第31页 |
| 3.2.6 脑组织中H_2O_2含量 | 第31-32页 |
| 3.3 丹参乙酸镁对神经细胞无糖低氧/复氧损伤保护作用及机制 | 第32-33页 |
| 3.3.1 神经细胞凋亡凋亡率和LDH的释放 | 第32页 |
| 3.3.2 神经细胞中NADPH氧化酶活性及H_2O_2含量 | 第32-33页 |
| 附图 | 第33-42页 |
| 4. 讨论 | 第42-44页 |
| 5. 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 综述 | 第48-56页 |
| 参考文献 | 第53-56页 |
| 攻读硕士学位期间主要研究成果及基金资助 | 第56-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
