| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 目录 | 第9-11页 |
| 本文常用英文缩略词表 | 第11-12页 |
| 第1章 绪论 | 第12-28页 |
| 1.1 肿瘤细胞检测的重要性及常规方法 | 第12-17页 |
| 1.1.1 肿瘤细胞检测的重要性 | 第12-13页 |
| 1.1.2 肿瘤细胞检测的常规方法 | 第13-17页 |
| 1.2 核酸适体的概念和特点 | 第17-19页 |
| 1.3 核酸适体探针在肿瘤细胞检测中的应用 | 第19-26页 |
| 1.3.1 “always on”检测策略 | 第20-24页 |
| 1.3.2 激活式检测策略 | 第24-26页 |
| 1.4 本文拟开展的工作 | 第26-28页 |
| 第2章 基于识别触发裂开型DNAzyme催化活性的免标记核酸适体探针用于肿瘤细胞激活式检测研究 | 第28-43页 |
| 2.1 前言 | 第28-29页 |
| 2.2 实验部分 | 第29-33页 |
| 2.2.1 试剂和仪器 | 第29-31页 |
| 2.2.2 肿瘤细胞的培养与传代 | 第31页 |
| 2.2.3 Split G-quadruplex的催化作用条件优化 | 第31-32页 |
| 2.2.4 HEPES buffer中aptamer对靶标细胞的识别效果考察 | 第32页 |
| 2.2.5 THAAP的构建及用于CCRF-CEM细胞特异性检测的可行性考察 | 第32页 |
| 2.2.6 THAAP检测CCRF-CEM细胞的条件优化 | 第32-33页 |
| 2.2.7 THAAP对CCRF-CEM细胞的定量检测考察 | 第33页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第33-42页 |
| 2.3.1 实验原理 | 第33-34页 |
| 2.3.2 Split G-quadruplex的催化作用条件优化 | 第34-37页 |
| 2.3.3 HEPES buffer中aptamer对靶标细胞的识别效果考察 | 第37-38页 |
| 2.3.4 THAAP的构建及其用于CCRF-CEM细胞特异性检测的可行性 | 第38-39页 |
| 2.3.5 THAAP检测CCRF-CEM细胞的条件优化 | 第39-40页 |
| 2.3.6 THAAP对CCRF-CEM细胞的定量检测考察 | 第40-42页 |
| 2.4 小结 | 第42-43页 |
| 第3章 基于细胞内荧光增强效应的DNA稳定银纳米簇-核酸适体探针用于肿瘤细胞激活式检测研究 | 第43-57页 |
| 3.1 前言 | 第43-44页 |
| 3.2 实验部分 | 第44-48页 |
| 3.2.1 试剂和仪器 | 第44-45页 |
| 3.2.2 肿瘤细胞的培养与传代 | 第45-46页 |
| 3.2.3 细胞的固定 | 第46页 |
| 3.2.4 Ag NCs的制备和表征 | 第46页 |
| 3.2.5 流式细胞仪分析Ag NCs的胞内荧光激活可行性和性能优化 | 第46-47页 |
| 3.2.6 激光共聚焦实验考察Ag NCs在细胞内的荧光激活位点 | 第47页 |
| 3.2.7 Ag NCs-aptamer用于CCRF-CEM细胞的特异性检测 | 第47-48页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第48-56页 |
| 3.3.1 Buffer中Ag NCs的荧光增强效应考察 | 第48-49页 |
| 3.3.2 Ag NCs的细胞内荧光激活性能考察 | 第49-51页 |
| 3.3.3 Ag NCs的细胞内荧光激活性能优化 | 第51-53页 |
| 3.3.4 Ag NCs的细胞内荧光激活位点考察 | 第53-54页 |
| 3.3.5 Ag NCs-aptamer探针的构建及用于CCRF-CEM细胞特异性分析的可行性 | 第54-56页 |
| 3.4 小结 | 第56-57页 |
| 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 附录A 攻读学位期间所发表的学术论文目录 | 第68页 |
