摘要 | 第1-6页 |
ABSTRACT | 第6-13页 |
第一章 前言 | 第13-41页 |
1 化学发光分析法 | 第13-20页 |
·化学发光技术简介 | 第13-14页 |
·化学发光的原理及特点 | 第14-15页 |
·常见的化学发光体系 | 第15-18页 |
·鲁米诺化学发光反应体系 | 第15-16页 |
·过氧化草酸酯类化学发光体系 | 第16-17页 |
·吖啶酯类化学发光体系 | 第17-18页 |
·高锰酸钾化学发光体系 | 第18页 |
·联吡啶钌配合物类发光体系 | 第18页 |
·化学发光分析法的最新进展 | 第18-20页 |
·化学发光免疫分析 | 第19页 |
·化学发光显微成像技术 | 第19页 |
·后化学发光反应的应用研究 | 第19页 |
·一些新技术与化学发光分析法的联用 | 第19-20页 |
2 光致电化学分析法 | 第20-25页 |
·光致电化学方法产生的背景 | 第20页 |
·光致电化学的原理 | 第20-21页 |
·光致电化学分析法的应用领域 | 第21-24页 |
·DNA 损伤的检测 | 第21-22页 |
·DNA 的检测 | 第22-23页 |
·生物亲和反应检测 | 第23页 |
·生物酶抑制剂的检测 | 第23-24页 |
·小分子物质的检测 | 第24页 |
·免疫传感器 | 第24页 |
·光致电化学方法未来的发展趋势 | 第24-25页 |
3 谷胱甘肽 | 第25-30页 |
·谷胱甘肽的性质及其分布 | 第25-26页 |
·GSH 的作用 | 第26-28页 |
·GSH 的生物学作用 | 第26-27页 |
·GSH 在食品加工领域的作用 | 第27-28页 |
·GSH 的检测方法 | 第28-30页 |
·荧光法 | 第28-29页 |
·分光光度法 | 第29页 |
·电化学法 | 第29-30页 |
·高效液相色谱法 | 第30页 |
4 DNA 生物传感器简介 | 第30-33页 |
·DNA 的组成与结构 | 第30-31页 |
·DNA 生物传感器的定义和基本原理 | 第31页 |
·DNA 生物传感器的分类 | 第31-33页 |
·电化学DNA 传感器 | 第32页 |
·光学DNA 传感器 | 第32页 |
·压电式DNA 传感器 | 第32-33页 |
·电化学DNA 传感器的设计与检测 | 第33页 |
·DNA 生物传感器的发展前景 | 第33页 |
5 本课题研究的内容及意义 | 第33-35页 |
参考文献 | 第35-41页 |
第二章 基于化学发光探针检测巯基化合物 | 第41-64页 |
·引言 | 第41页 |
·实验仪器与试剂 | 第41-43页 |
·实验仪器 | 第41-42页 |
·主要试剂 | 第42页 |
·溶液的配制 | 第42-43页 |
·实验部分 | 第43-45页 |
·合成配体L | 第43页 |
·合成双核铜配合物Cu_2L_2 | 第43页 |
·双核铜配合物Cu_2L_2 对Luminol-H_2O_2 化学发光体系的催化 | 第43-44页 |
·双核铜配合物Cu_2L_2 与GSH 竞争 | 第44页 |
·细胞培养 | 第44-45页 |
·细胞内非蛋白巯基的检测 | 第45页 |
·细胞内蛋白巯基的检测 | 第45页 |
·结果与讨论 | 第45-62页 |
·配体L 及双核铜配合物Cu_2L_2 的结构表征 | 第45-47页 |
·配体L 的元素分析 | 第45-46页 |
·配体L 的1H NMR 分析 | 第46页 |
·双核铜配合物Cu_2L_2 的质谱分析 | 第46-47页 |
·铜离子与配合物Cu_2L_2 对Luminol-H_2O_2 化学发光体系的催化对比 | 第47-48页 |
·双核铜配合物Cu_2L_2 与GSH 的竞争证明 | 第48-49页 |
·GSH 和探针Cu_2L_2 的反应条件的优化 | 第49-51页 |
·GSH 和探针Cu_2L_2 竞争pH 的优化 | 第49-50页 |
·GSH 和探针Cu_2L_2 竞争的时间优化 | 第50-51页 |
·Luminol-H_2O_2-Cu_2L_2 化学发光体系条件的优化 | 第51-54页 |
·pH 值对Luminol-H_2O_2-Cu_2L_2 化学发光体系的影响 | 第51-52页 |
·Luminol 浓度对Luminol-H_2O_2-Cu_2L_2 化学发光体系的影响 | 第52页 |
·H_2O_2 浓度对Luminol-H_2O_2-Cu_2L_2 化学发光体系的影响 | 第52-53页 |
·双核铜配合物Cu_2L_2 浓度对Luminol-H_2O_2 化学发光体系的影响 | 第53-54页 |
·利用双核铜配合物Cu_2L_2 作为探针探针对GSH 定量检测 | 第54-56页 |
·Cu_2L_2 与各种巯基化合物的选择性研究 | 第56-58页 |
·Cu_2L_2 与非蛋白巯基化合物的选择性研究 | 第56页 |
·Cu_2L_2 与蛋白巯基化合物的作用 | 第56-58页 |
·Cu_2L_2 与GSH 作用的干扰物质研究 | 第58-59页 |
·Cu_2L_2 对小白鼠淋巴白血病细胞中巯基化合物的检测 | 第59-62页 |
·细胞中非蛋白巯基和蛋白巯基化合物的抑制对比 | 第59-60页 |
·与电化学检测GSH 的方法对比 | 第60-62页 |
·本章小结 | 第62-63页 |
参考文献 | 第63-64页 |
第三章 基于打断双硫键检测谷胱甘肽的光致电化学传感器的研究 | 第64-76页 |
·引言 | 第64-65页 |
·实验部分 | 第65-68页 |
·仪器 | 第65页 |
·试剂 | 第65页 |
·溶液的配制 | 第65页 |
·光电活性配合物的合成 | 第65-66页 |
·配合物Ru(bpy)2Cl·2H20 的合成 | 第65-66页 |
·光电活性物质[Ru(bpy)2dppz](BF4)2 ·2H20 的合成 | 第66页 |
·氨基修饰的[Ru(bpy)2dppz]2+-Si02 纳米粒子的合成 | 第66-67页 |
·导电玻璃电极的表面修饰 | 第67-68页 |
·半导体材料在ITO 电极表面的修饰 | 第67页 |
·51102/ITO 电极表面的氨基化 | 第67页 |
·[Ru(bpy)2dppz]2+- Si02 NPS 修饰ITO 电极 | 第67-68页 |
·[Ru(bpy)2dppz]2+- Si02 NPS/51102/ITO 电极的光电流响应 | 第68页 |
·还原型谷胱甘肽的检测 | 第68页 |
·实验结果与讨论 | 第68-74页 |
·实验原理示意图 | 第68-69页 |
·[Ru(bpy)2dppz]2+-Si02 NPS 的形态表征 | 第69页 |
·[Ru(bpy)2dppz]2+- Si02 NPS/51102/ITO 电极的光电特性 | 第69-70页 |
·实验条件的优化 | 第70-72页 |
·C2042-浓度的优化 | 第70-71页 |
·GSH 与[Ru(bpy)2dppz]2+-Si02 NPS/ITO 电极作用的pH 优化 | 第71-72页 |
·GSH 与[Ru(bpy)2dppz]2+-Si02 NPS/ITO 电极作用的时间优化 | 第72页 |
·[Ru(bpy)2dppz]2+-Si02 NPS/ITO 传感器检测GSH | 第72-74页 |
·稳定性与重现性 | 第74页 |
·本章小结 | 第74-75页 |
参考文献 | 第75-76页 |
第四章 利用化学发光反应作为光源的新型光致电化学 DNA 传感器的研究 | 第76-87页 |
·引言 | 第76页 |
·实验部分 | 第76-80页 |
·仪器 | 第76-77页 |
·试剂 | 第77页 |
·ITO 电极的表面修饰硅烷化 | 第77页 |
·ITO 电极表面修饰捕获DNA | 第77页 |
·ITO 修饰电极与目标DNA 杂交及扦插光电活性物质 | 第77-78页 |
·利用CIPO-H_2O_2-9,10-二苯蒽发光体系作为光源进行光电化学检测 | 第78-79页 |
·Ru(bpy)_2dppz~(2+)与纳米金的复合物修饰ITO 电极的光电特性 | 第79页 |
·金纳米粒子的合成 | 第79页 |
·Ru(bpy)_2dppz~(2+)与纳米金的复合物修饰ITO 电极的光电检测 | 第79页 |
·CdSe 量子点复合层修饰金电极的光电响应 | 第79-80页 |
·CdSe 量子点的合成 | 第79页 |
·CdSe 量子点复合层修饰金电极的光电响应 | 第79-80页 |
·实验结果与讨论 | 第80-84页 |
·实验原理图 | 第80页 |
·CIPO-H_2O_2-9,10-二苯基蒽化学发光波长的选择 | 第80-81页 |
·主机偏执电压的优化 | 第81-82页 |
·检测目标DNA | 第82-83页 |
·碱基错配DNA 序列的对比 | 第83-84页 |
·CIPO-H_2O_2-9,10-二苯蒽化学发光体系在其它光电体系中的应用 | 第84-85页 |
·Ru(bpy)_2dppz~(2+) 与 AuNPS 复合物的光电响应 | 第84页 |
·PDDA/CdSe/Au 体系的光电响应 | 第84-85页 |
·本章小结 | 第85-86页 |
参考文献 | 第86-87页 |
结论 | 第87-89页 |
致谢 | 第89-90页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文目录 | 第90-91页 |