| 摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-43页 |
| 第一节 前言 | 第18-27页 |
| 1.1.1 对虾养殖业现状 | 第18-21页 |
| 1.1.1.1 养殖业重要性：凡纳滨对虾 | 第18-20页 |
| 1.1.1.2 对虾养殖业面临的问题：疾病 | 第20-21页 |
| 1.1.2 对虾主要疾病 | 第21-22页 |
| 1.1.2.1 病毒病 | 第21页 |
| 1.1.2.2 弧菌病：哈维氏弧菌 | 第21-22页 |
| 1.1.3 对虾疾病防治策略 | 第22-25页 |
| 1.1.3.1 控制病原：现状与局限性 | 第22-24页 |
| 1.1.3.2 改善水体环境：现状与局限性 | 第24页 |
| 1.1.3.3 增强对虾体质：优势 | 第24-25页 |
| 1.1.4 对虾抗病选育及抗病免疫研究概况 | 第25-26页 |
| 1.1.4.1 抗病毒品种选育及抗病免疫研究：现状与成效 | 第25页 |
| 1.1.4.2 对虾抗弧菌品种选育及抗病免疫研究：现状与不足 | 第25-26页 |
| 1.1.5 本研究的主要目的及意义 | 第26-27页 |
| 第二节 对虾抗病病程特征研究进展 | 第27-29页 |
| 1.2.1 概述 | 第27页 |
| 1.2.2 对虾抗病毒病程特征研究进展 | 第27-28页 |
| 1.2.3 对虾抗菌病程特征研究现状：不足与展望 | 第28-29页 |
| 第三节 抗病对虾选择研究进展 | 第29-32页 |
| 1.3.1 抗病对虾选择概述 | 第29-30页 |
| 1.3.1.1 生产导向型抗病对虾选育 | 第29页 |
| 1.3.1.2 生产兼研究导向型抗病对虾选育 | 第29-30页 |
| 1.3.1.3 研究导向型抗病对虾选择 | 第30页 |
| 1.3.2 抗病对虾选择方法 | 第30-31页 |
| 1.3.2.1 选择育种 | 第30-31页 |
| 1.3.2.2 攻毒选择 | 第31页 |
| 1.3.3 不足与展望 | 第31-32页 |
| 第四节 对虾抗病免疫反应模式研究进展 | 第32-41页 |
| 1.4.1 概述 | 第32-33页 |
| 1.4.1.1 免疫反应模式简介 | 第32页 |
| 1.4.1.2 免疫反应模式研究的内容和意义 | 第32-33页 |
| 1.4.2 对虾免疫系统概况 | 第33-34页 |
| 1.4.3 血淋巴细胞 | 第34-35页 |
| 1.4.3.1 血淋巴细胞数量 | 第34页 |
| 1.4.3.2 血淋巴细胞分类 | 第34-35页 |
| 1.4.3.3 血淋巴细胞的免疫作用方式 | 第35页 |
| 1.4.4 对虾主要免疫因子 | 第35-38页 |
| 1.4.4.1 血蓝蛋白（HEM） | 第35-36页 |
| 1.4.4.2 酚氧化酶（PO） | 第36页 |
| 1.4.4.3 一氧化氮合成酶（NOS） | 第36-37页 |
| 1.4.4.4 活性氧分子 | 第37页 |
| 1.4.4.5 超氧化物歧化酶（SOD） | 第37页 |
| 1.4.4.6 谷胱甘肽过氧化物酶（GPX） | 第37页 |
| 1.4.4.7 过氧化氢酶（CAT） | 第37页 |
| 1.4.4.8 抗菌肽 | 第37-38页 |
| 1.4.4.9 溶菌酶（LYS） | 第38页 |
| 1.4.4.10 酸性磷酸酶（ACP）和碱性磷酸酶（AKP） | 第38页 |
| 1.4.5 对虾抗病免疫反应 | 第38-40页 |
| 1.4.5.1 血淋巴细胞的免疫反应 | 第38-39页 |
| 1.4.5.2 其它器官的免疫反应 | 第39-40页 |
| 1.4.6 对虾抗病免疫反应过程：免疫反应模式 | 第40-41页 |
| 1.4.6.1 抗病毒免疫反应模式研究进展 | 第40页 |
| 1.4.6.2 抗菌免疫反应模式研究现状：不足与展望 | 第40-41页 |
| 第五节 对虾关键免疫因子研究进展 | 第41-42页 |
| 1.5.1 概述 | 第41页 |
| 1.5.2 不足与展望 | 第41-42页 |
| 第六节 本研究的主要内容 | 第42-43页 |
| 第二章 凡纳滨对虾抗哈维氏弧菌感染的病程特征 | 第43-67页 |
| 第一节 致病性哈维氏弧菌的分离和鉴定 | 第43-54页 |
| 2.1.1 前言 | 第43页 |
| 2.1.2 材料与方法 | 第43-44页 |
| 2.1.2.1 试验动物 | 第43页 |
| 2.1.2.2 药品和试剂 | 第43页 |
| 2.1.2.3 细菌分离与纯化 | 第43-44页 |
| 2.1.2.4 细菌生理生化试验 | 第44页 |
| 2.1.2.5 细菌 16S rRNA 基因序列分析 | 第44页 |
| 2.1.2.6 致病性检测 | 第44页 |
| 2.1.2.7 数据分析 | 第44页 |
| 2.1.2 结果 | 第44-52页 |
| 2.1.2.1 培养特征 | 第44-46页 |
| 2.1.2.2 生化特征 | 第46-47页 |
| 2.1.2.3 生长特征 | 第47-48页 |
| 2.1.2.4 药物敏感性特征 | 第48-50页 |
| 2.1.2.5 16S rRNA 基因序列分析 | 第50-51页 |
| 2.1.2.6 致病性检测 | 第51-52页 |
| 2.1.3 讨论 | 第52-54页 |
| 2.1.3.1 菌株 NJ1 具有哈维氏弧菌的生理生化特征 | 第52页 |
| 2.1.3.2 菌株 NJ1 的 16S rRNA 序列具有哈维氏弧菌同源性 | 第52-53页 |
| 2.1.3.3 菌株 NJ1 对凡纳滨对虾具有致病性 | 第53-54页 |
| 第二节 凡纳滨对虾抗哈维氏弧菌感染的病程特征 | 第54-66页 |
| 2.2.1 引言 | 第54页 |
| 2.2.2 材料与方法 | 第54-55页 |
| 2.2.2.1 试验动物 | 第54页 |
| 2.2.2.2 药品和试剂 | 第54页 |
| 2.2.2.3 细菌培养 | 第54页 |
| 2.2.2.4 感染试验 | 第54-55页 |
| 2.2.2.5 数据分析 | 第55页 |
| 2.2.3 结果 | 第55-63页 |
| 2.2.3.1 凡纳滨对虾各家系对菌株 NJ1 的易感性 | 第55-57页 |
| 2.2.3.2 高易感性对虾病程特征 | 第57-59页 |
| 2.2.3.3 中易感性对虾病程特征 | 第59-61页 |
| 2.2.3.4 低易感性对虾病程特征 | 第61-63页 |
| 2.2.3.5 抗病对虾病程特征 | 第63页 |
| 2.2.4 讨论 | 第63-66页 |
| 2.2.4.1 对虾感染病原后的死亡时间随抗病性能增强而延迟 | 第63-65页 |
| 2.2.4.2 对虾感染病原后的死亡均发生在一段时间之后 | 第65页 |
| 2.2.4.3 对虾感染病原后的死亡高峰期随抗病性能增强而延迟 | 第65页 |
| 2.2.4.4 对虾感染病原后的死亡均发生在一定时间之内 | 第65页 |
| 2.2.4.5 抗病对虾抗菌感染的病程特征比普通对虾更稳定 | 第65-66页 |
| 第三节 小结 | 第66-67页 |
| 第三章 凡纳滨对虾抗哈维氏弧菌免疫反应特征 | 第67-91页 |
| 第一节 抗哈维氏弧菌凡纳滨对虾的筛选 | 第67-80页 |
| 3.1.1 前言 | 第67页 |
| 3.1.2 材料与方法 | 第67-69页 |
| 3.1.2.1 试验动物 | 第67页 |
| 3.1.2.2 药品和试剂 | 第67页 |
| 3.1.2.3 细菌培养 | 第67页 |
| 3.1.2.4 感染试验 | 第67-68页 |
| 3.1.2.5 普通对虾抗病性能测定 | 第68页 |
| 3.1.2.6 抗哈维氏弧菌凡纳滨对虾筛选 | 第68页 |
| 3.1.2.7 数据分析 | 第68-69页 |
| 3.1.3 结果 | 第69-77页 |
| 3.1.3.1 筛选对虾的 LD50 | 第69-70页 |
| 3.1.3.2 筛选对虾感染菌株 NJ1 后的存活率 | 第70-71页 |
| 3.1.3.3 筛选对虾感染菌株 NJ1 后的死亡时间 | 第71-73页 |
| 3.1.3.4 筛选对虾抗哈维氏弧菌感染的其它病程特征 | 第73-77页 |
| 3.1.4 讨论 | 第77-80页 |
| 3.1.4.1 多轮连续攻毒后对虾感染病原后的存活率提高 | 第77页 |
| 3.1.4.2 多轮连续攻毒后对虾抗菌感染的能力提高 | 第77-78页 |
| 3.1.4.3 对虾 6 h LD50 更能反映其免疫能力 | 第78-79页 |
| 3.1.4.4 筛选对虾具有抗病对虾抗菌感染的一般病程特征 | 第79-80页 |
| 第二节 凡纳滨对虾主要免疫因子抗菌反应模式 | 第80-90页 |
| 3.2.1 引言 | 第80页 |
| 3.2.2 材料与方法 | 第80-83页 |
| 3.2.2.1 试验动物 | 第80页 |
| 3.2.2.2 药品和试剂 | 第80页 |
| 3.2.2.3 细菌培养 | 第80-81页 |
| 3.2.2.4 普通对虾预处理 | 第81页 |
| 3.2.2.5 感染试验和采样 | 第81-82页 |
| 3.2.2.6 血细胞计数 | 第82页 |
| 3.2.2.7 血淋巴液血浆制备 | 第82页 |
| 3.2.2.8 菌落计数 | 第82页 |
| 3.2.2.9 血浆免疫指标测定 | 第82页 |
| 3.2.2.10 数据分析 | 第82-83页 |
| 3.2.3. 结果 | 第83-88页 |
| 3.2.3.1 感染菌株 NJ1 后对虾血淋巴液弧菌数量的变化 | 第83页 |
| 3.2.3.2 对虾 THC 的抗菌反应模式 | 第83-84页 |
| 3.2.3.3 对虾 PO 的抗菌反应模式 | 第84-85页 |
| 3.2.3.4 对虾 SOD 的抗菌反应模式 | 第85-86页 |
| 3.2.3.5 对虾 HEM 的抗菌反应模式 | 第86-87页 |
| 3.2.3.6 对虾 BAC 的抗菌反应模式 | 第87-88页 |
| 3.2.4 讨论 | 第88-90页 |
| 3.2.4.1 对虾能够快速清除血淋巴液中的病原且抗病虾更快速 | 第88-89页 |
| 3.2.4.2 抗病对虾 THC 的抗菌免疫反应与普通虾相似但更敏感 | 第89页 |
| 3.2.4.3 抗病对虾 PO 和 SOD 抗菌免疫反应与普通虾相似但更有效 | 第89页 |
| 3.2.4.4 抗病对虾血蓝蛋白抗菌免疫反应与普通虾相似但更迅速 | 第89页 |
| 3.2.4.5 抗病对虾杀菌活性抗病反应与普通对虾相似但更有效 | 第89-90页 |
| 第三节 小结 | 第90-91页 |
| 第四章 凡纳滨对虾抗哈维氏弧菌感染的关键免疫参数 | 第91-109页 |
| 第一节 对虾免疫系统与抗病性能相关关系模型建立与分析 | 第91-108页 |
| 4.1.1 前言 | 第91页 |
| 4.1.2 材料与方法 | 第91-93页 |
| 4.1.2.1 试验动物 | 第91页 |
| 4.1.2.2 药品和试剂 | 第91页 |
| 4.1.2.3 细菌培养 | 第91-92页 |
| 4.1.2.4 普通对虾预处理 | 第92页 |
| 4.1.2.5 血淋巴液血浆制备 | 第92页 |
| 4.1.2.6 血淋巴细胞裂解液制备 | 第92页 |
| 4.1.2.7 肝胰腺匀浆液制备 | 第92页 |
| 4.1.2.8 免疫参数测定 | 第92-93页 |
| 4.1.2.9 数据分析 | 第93页 |
| 4.1.3 结果 | 第93-100页 |
| 4.1.3.1 模型建立与选择 | 第93-96页 |
| 4.1.3.2 模型优化 | 第96-99页 |
| 4.1.3.3 模型分析 | 第99-100页 |
| 4.1.4 讨论 | 第100-108页 |
| 4.1.4.1 免疫因子在不同器官中对抗病性能具有不同的总效应 | 第100-104页 |
| 4.1.4.2 对虾大多数免疫因子对抗病性能具有显著的效应 | 第104-107页 |
| 4.1.4.3 各免疫参数相互间的作用对抗病性能也具有显著的效应 | 第107-108页 |
| 第二节 小结 | 第108-109页 |
| 结论 | 第109-110页 |
| 创新点和不足之处 | 第110-111页 |
| 展望 | 第111-112页 |
| 参考文献 | 第112-131页 |
| 缩略词 | 第131-132页 |
| 致谢 | 第132-133页 |
| 作者简介 | 第133页 |
