| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 缩略词 | 第8-10页 |
| 第一章 引言 | 第10-37页 |
| 1.1 生物钟概述 | 第10-26页 |
| 1.2 表观遗传学修饰参与生物钟运行的调控 | 第26-28页 |
| 1.3 组蛋白甲基转移酶SET-2的同源蛋白及其生物学功能 | 第28-33页 |
| 1.4 组蛋白的乙酰化与去乙酰化 | 第33-36页 |
| 1.5 本课题的研究内容与意义 | 第36-37页 |
| 第二章 材料与方法 | 第37-57页 |
| 2.1 培养基 | 第37-38页 |
| 2.2 本研究引物列表 | 第38-42页 |
| 2.3 本课题相关质粒 | 第42页 |
| 2.4 大肠杆菌菌株 | 第42-43页 |
| 2.5 粗糙脉孢菌菌株 | 第43-44页 |
| 2.6 抗体 | 第44页 |
| 2.7 载体构建 | 第44页 |
| 2.8 突变载体的构建 | 第44-45页 |
| 2.9 粗糙脉孢菌基因缺失突变体的构建 | 第45-46页 |
| 2.10 粗糙脉孢菌的电穿孔基因转化 | 第46页 |
| 2.11 在斜面培养基上观察粗糙脉孢菌的表型 | 第46-47页 |
| 2.12 用竞争性生长管(Race tube)检测粗糙脉孢菌的表型 | 第47页 |
| 2.13 荧光素酶报告系统检测生物节律变化 | 第47页 |
| 2.14 粗糙脉孢菌可溶性蛋白的提取 | 第47-48页 |
| 2.15 Western免疫印迹 | 第48-49页 |
| 2.16 蛋白降解实验 | 第49页 |
| 2.17 可溶性GST融合蛋白的诱导表达和纯化 | 第49-50页 |
| 2.18 多克隆抗体的制备 | 第50-51页 |
| 2.19 Northern印迹 | 第51-52页 |
| 2.20 RT-qPCR | 第52-53页 |
| 2.21 染色质免疫共沉淀(Chromatin Immunoprecipitation) | 第53-55页 |
| 2.22 昼夜节律实验(rhythm) | 第55-57页 |
| 第三章 组蛋白甲基转移酶SET-2调控frq基因转录的机制 | 第57-74页 |
| 3.1 研究背景 | 第57页 |
| 3.2 SET-2直接结合到frq基因的ORF区域来调控其表达 | 第57-60页 |
| 3.3 SET-2通过H3K36的甲基化修饰参与生物钟调控 | 第60-62页 |
| 3.4 SET-2通过Rpd3S复合体调控frq基因的转录 | 第62-69页 |
| 3.5 SET-2与CHD-1共同抑制转录过程中新旧组蛋白的交换 | 第69-71页 |
| 3.6 小结与讨论 | 第71-74页 |
| 第四章 组蛋白去乙酰化酶HDA-2调控frq基因转录的机制 | 第74-85页 |
| 4.1 研究背景 | 第74页 |
| 4.2 组蛋白去乙酰化酶HDA-2负责激活不依赖于WC复合体的frq转录 | 第74-76页 |
| 4.3 组蛋白去乙酰化酶HDA-2影响生物钟的振幅 | 第76-82页 |
| 4.4 HDA-2对wc基因的转录调控 | 第82-83页 |
| 4.5 小结与讨论 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-93页 |
| 致谢 | 第93-94页 |
| 个人简历 | 第94页 |
