中文摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4页 |
第1章 绪论 | 第10-19页 |
1.1 微球的概述 | 第10-15页 |
1.1.1 微球的概念 | 第10-11页 |
1.1.2 微球的载体材料 | 第11页 |
1.1.3 微球的制备方法 | 第11-15页 |
1.2 聚乙二醇接枝物的研究进展 | 第15-17页 |
1.3 模型药物帕利哌酮简介 | 第17页 |
1.4 立题依据及意义 | 第17-19页 |
第2章 体外分析方法的建立 | 第19-28页 |
2.1 仪器与试剂 | 第19-20页 |
2.1.1 仪器 | 第19页 |
2.1.2 试剂 | 第19-20页 |
2.2 帕利哌酮分析方法的建立 | 第20-21页 |
2.2.1 吸收波长的确定 | 第20页 |
2.2.2 色谱条件 | 第20-21页 |
2.3 方法学验证 | 第21-24页 |
2.3.1 线性关系考察 | 第21-22页 |
2.3.2 精密度实验 | 第22页 |
2.3.3 重复性实验 | 第22-24页 |
2.4 帕利哌酮稳定性考察 | 第24页 |
2.5 含量测定 | 第24-25页 |
2.5.1 专属性实验 | 第24-25页 |
2.5.2 标准曲线的建立 | 第25页 |
2.5.3 操作方法 | 第25页 |
2.6 讨论 | 第25-26页 |
2.7 本章小结 | 第26-28页 |
第3章 帕利哌酮缓释微球的工艺研究 | 第28-69页 |
3.1 仪器与试剂 | 第28-30页 |
3.1.1 仪器 | 第28-29页 |
3.1.2 试剂 | 第29-30页 |
3.2 帕利哌酮丁二酸单酯(PPS)的合成与表征 | 第30-38页 |
3.2.1 PPS的合成 | 第30-31页 |
3.2.2 PPS的单因素考察 | 第31-35页 |
3.2.3 PPS的表征 | 第35-38页 |
3.3 帕利哌酮丁二酸单酯酰氯(PP-COCl)的合成 | 第38-39页 |
3.4 聚乙二醇接枝帕利哌酮丁二酸单酯酰氯接枝物(PEG-g-PP)的合成与表征 | 第39-48页 |
3.4.1 PEG-g-PP的合成 | 第39-41页 |
3.4.2 PEG-g-PP的表征 | 第41-48页 |
3.5 帕利哌酮缓释微球的制备 | 第48-51页 |
3.5.1 溶剂挥发法类型的选择 | 第48-49页 |
3.5.2 有机溶剂的选择 | 第49-50页 |
3.5.3 乳化剂的选择 | 第50页 |
3.5.4 有机溶剂挥发时间的选择 | 第50页 |
3.5.5 有机溶剂挥发温度的选择 | 第50-51页 |
3.6 帕利哌酮微球的单因素考察 | 第51-55页 |
3.6.1 PEG6000-g-PP的浓度 | 第52页 |
3.6.2 连续相与分散相的体积比 | 第52-53页 |
3.6.3 Span-80的浓度 | 第53-54页 |
3.6.4 乳化时的转速 | 第54-55页 |
3.6.5 乳化时间 | 第55页 |
3.7 帕利哌酮微球的工艺优化 | 第55-62页 |
3.7.1 优化设计 | 第55-57页 |
3.7.2 结果分析 | 第57-62页 |
3.8 帕利哌酮微球的质量评价 | 第62-65页 |
3.8.1 光学图片分析 | 第62页 |
3.8.2 扫描电镜分析 | 第62-63页 |
3.8.3 粒径分布 | 第63-64页 |
3.8.4 微球的含量测定 | 第64-65页 |
3.9 讨论 | 第65-67页 |
3.10 本章小结 | 第67-69页 |
第4章 帕利哌酮缓释微球的体内评价 | 第69-78页 |
4.1 仪器与试剂 | 第69-70页 |
4.1.1 仪器 | 第69页 |
4.1.2 试剂 | 第69-70页 |
4.2 帕利哌酮体内血药浓度分析方法的建立 | 第70-75页 |
4.2.1 帕利哌酮标准液与内标液的制备 | 第70页 |
4.2.2 液相色谱条件 | 第70-71页 |
4.2.3 血浆样品的处理 | 第71页 |
4.2.4 分离度和专属性 | 第71-72页 |
4.2.5 标准曲线的制备 | 第72-73页 |
4.2.6 方法学验证 | 第73-75页 |
4.3 帕利哌酮缓释微球小鼠体内药动学研究 | 第75-76页 |
4.3.1 实验对象 | 第75页 |
4.3.2 给药方案及血样采集 | 第75页 |
4.3.3 实验结果 | 第75-76页 |
4.4 讨论 | 第76-77页 |
4.5 本章小结 | 第77-78页 |
结论 | 第78-80页 |
参考文献 | 第80-88页 |
致谢 | 第88-89页 |
攻读硕士学位期间的学术成果 | 第89-90页 |