摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4-5页 |
第一章 绪论 | 第9-18页 |
1 荧光传感器简介 | 第9页 |
2 本文涉及的主要功能材料简介 | 第9-13页 |
2.1 石墨烯 | 第9-11页 |
2.1.1 石墨烯制备方法与性能 | 第10页 |
2.1.2 石墨烯的应用 | 第10-11页 |
2.2 多巴胺和聚多巴胺简介 | 第11页 |
2.3 海藻酸钠 | 第11-12页 |
2.4 纳米材料Fe_3O_4及其在酶固定化方面的应用 | 第12页 |
2.5 金纳米簇 | 第12页 |
2.6 牛血清白蛋白 | 第12-13页 |
3 本文涉及的主要检测对象与方式 | 第13-15页 |
3.1 铜离子的检测 | 第13-14页 |
3.2 生物细胞标记成像 | 第14页 |
3.3 环境污染物的降解与吸附 | 第14-15页 |
4 自然酶与模拟酶的研究进展 | 第15-17页 |
4.1 自然酶简介 | 第15页 |
4.2 固定化酶 | 第15页 |
4.3 血红素简介 | 第15-17页 |
5 本文构思及研究内容 | 第17-18页 |
第二章 QG@PDA荧光纳米材料的制备及其用于铜离子的荧光分析与成像 | 第18-32页 |
1 引言 | 第18-19页 |
2 实验部分 | 第19-20页 |
2.1 仪器与试剂 | 第19页 |
2.2 QG@PDA纳米模拟材料和PDA纳米材料的制备 | 第19-20页 |
2.3 铜离子分别对QG@PDA纳米模拟材料和PDA纳米材料的荧光强度的影响 | 第20页 |
2.4 QG@PDA纳米模拟材料用于检测Cu~(2+)的荧光成像 | 第20页 |
3 结果与讨论 | 第20-31页 |
3.1 QG@PDA纳米模拟材料的合成和表征 | 第20-23页 |
3.2 QG@PDA的荧光性能 | 第23-26页 |
3.3 基于QG@PDA的荧光性能检测Cu~(2+)的主要条件的优化 | 第26-27页 |
3.4 基于QG@PDA的荧光性能检测Cu~(2+) | 第27-28页 |
3.5 基于QG@PDA的荧光分析及对Cu~(2+)样品的荧光成像 | 第28-31页 |
4 小结 | 第31-32页 |
第三章 磁性血红素固定化酶的制备及其催化降解应用 | 第32-40页 |
1 引言 | 第32-33页 |
2 实验部分 | 第33-34页 |
2.1 仪器与试剂 | 第33页 |
2.2 磁性固定化酶的制备过程 | 第33-34页 |
2.2.1 Fe_3O_4的制备 | 第33页 |
2.2.2 Hem-Au的合成 | 第33页 |
2.2.3 SA-Hem-Au-QG-Fe_3O_4颗粒的制备 | 第33-34页 |
3 结果与讨论 | 第34-39页 |
3.1 Hem-Au的表征 | 第34页 |
3.2 Hem-Au-QG-Fe_3O_4催化性能的研究 | 第34-35页 |
3.3 海藻酸钠介导的固定化酶的制备 | 第35页 |
3.4 主要合成条件的优化 | 第35-37页 |
3.5 磁性固定化酶的初步应用 | 第37-39页 |
4 小结 | 第39-40页 |
第四章 基于血红素-牛血清白蛋白模拟酶的制备及其初步的检测应用 | 第40-52页 |
1 引言 | 第40-41页 |
2 实验部分 | 第41-43页 |
2.1 仪器与试剂 | 第41页 |
2.2 主要试剂 | 第41页 |
2.3 Hem-BSA模拟酶的制备与表征 | 第41-42页 |
2.4 Hem-BSA的过氧化物酶活性的研究 | 第42-43页 |
2.4.1 BSA增强Hem催化活性的分析 | 第42页 |
2.4.2 条件优化分析 | 第42页 |
2.4.3 米氏常数的测定 | 第42页 |
2.4.4 Hem-BSA模拟酶用于过氧化氢的检测 | 第42-43页 |
3 结果与讨论 | 第43-51页 |
3.1 机理与表征 | 第43-44页 |
3.2 催化性能的探究 | 第44-45页 |
3.3 Hem-BSA复合材料的光学性能 | 第45-46页 |
3.4 稳定性的考察 | 第46页 |
3.5 主要条件的优化 | 第46-48页 |
3.6 米氏常数的计算 | 第48-50页 |
3.7 Hem-BSA对过氧化氢的检测 | 第50-51页 |
4 小结 | 第51-52页 |
本文总结 | 第52-54页 |
参考文献 | 第54-63页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文及成果 | 第63-64页 |
致谢 | 第64页 |