| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略词表 | 第10-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-18页 |
| 1.1 系统性红斑狼疮的简介 | 第12-13页 |
| 1.2 SLE与B细胞 | 第13-14页 |
| 1.3 SLE与IFN-α | 第14-15页 |
| 1.4 IFN-α作用于B细胞参与SLE的病程 | 第15-17页 |
| 1.5 CD180与SLE | 第17-18页 |
| 第二章 CD180在SLE B细胞上的表达变化及CD180~-B细胞的表型鉴定 | 第18-29页 |
| 2.1 引言 | 第18页 |
| 2.2 实验材料 | 第18-19页 |
| 2.2.1 实验对象 | 第18-19页 |
| 2.2.2 主要实验试剂 | 第19页 |
| 2.2.3 主要实验仪器 | 第19页 |
| 2.3 实验方法 | 第19-22页 |
| 2.3.1 人外周血单个核细胞(PBMCs)的分离及磁珠分选CD19~+B细胞 | 第19-20页 |
| 2.3.2 小鼠脾脏B细胞的分离与培养 | 第20-21页 |
| 2.3.3 提取总RNA | 第21页 |
| 2.3.4 反转录及Q-PCR | 第21-22页 |
| 2.3.5 流式细胞术 | 第22页 |
| 2.3.6 数据分析统计 | 第22页 |
| 2.4 实验结果 | 第22-28页 |
| 2.4.1 SLE病人PBMCs CD180~-B细胞比例增加 | 第22-23页 |
| 2.4.2 MRL/lpr小鼠脾脏、PBMCs以及骨髓CD180~-B细胞比例增加 | 第23-26页 |
| 2.4.3 CD180~-B细胞表型鉴定 | 第26-28页 |
| 2.5 讨论 | 第28-29页 |
| 第三章 激活CD180对IFN-α通路的抑制作用及机制 | 第29-42页 |
| 3.1 引言 | 第29页 |
| 3.2 实验材料 | 第29-30页 |
| 3.2.1 实验对象 | 第29-30页 |
| 3.2.2 主要实验试剂 | 第30页 |
| 3.2.3 主要实验仪器 | 第30页 |
| 3.3 实验方法 | 第30-32页 |
| 3.3.1 小鼠脾脏B细胞的分离与培养 | 第30-31页 |
| 3.3.2 提取总RNA | 第31页 |
| 3.3.3 反转录及Q-PCR | 第31页 |
| 3.3.4 免疫印迹检测蛋白表达水平 | 第31-32页 |
| 3.3.5 小鼠模型 | 第32页 |
| 3.4 实验结果 | 第32-40页 |
| 3.4.1 激活CD180通路抑制IFN-α下游基因表达 | 第32-33页 |
| 3.4.2 激活CD180通路抑制IFN-α下游通路STAT-2的磷酸化水平 | 第33-35页 |
| 3.4.3 CD180通过Lyn-PI3K-BTK信号轴抑制IFN-α通路 | 第35-36页 |
| 3.4.4 动物模型验证激活CD180通路对IFN-α通路的抑制作用 | 第36-38页 |
| 3.4.5 激活TLR7、TLR9通路抑制B细胞CD180的表达 | 第38-39页 |
| 3.4.6 R848或CpG预处理B细胞逆转CD180通路对IFN-α通路的抑制 | 第39-40页 |
| 3.5 讨论 | 第40-42页 |
| 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-50页 |
| 附录 | 第50-51页 |
| 硕士期间已发表的及待发表的论文 | 第51-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
