| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 综述 | 第12-28页 |
| 第一节 杜仲概况 | 第12-20页 |
| 1 杜仲的化学成分 | 第12-15页 |
| 2 杜仲的药理作用 | 第15-20页 |
| 第二节 皮肤衰老研究进展 | 第20-24页 |
| 1 皮肤衰老 | 第20页 |
| 2 皮肤细胞衰老 | 第20-21页 |
| 3 皮肤衰老机制的研究进展 | 第21-24页 |
| 第三节 成纤维细胞衰老致皮肤老化的作用机制研究进展 | 第24-25页 |
| 第四节 选题依据和研究意义 | 第25-28页 |
| 1 选题依据 | 第25-26页 |
| 2 研究意义 | 第26-28页 |
| 第二章 H_2O_2、UV(UVA+UVB)对ESF-1细胞损伤条件的筛选 | 第28-36页 |
| 1 材料与仪器设备 | 第28-29页 |
| 1.1 材料 | 第28页 |
| 1.2 仪器 | 第28-29页 |
| 2 方法 | 第29-31页 |
| 2.1 溶液的配制 | 第29-30页 |
| 2.2 ESF-1 细胞株的体外培养、传代、冻存与复苏 | 第30-31页 |
| 2.3 实验分组 | 第31页 |
| 2.4 MTT法检测细胞活性 | 第31页 |
| 2.5 统计学处理 | 第31页 |
| 3 结果 | 第31-34页 |
| 3.1 H_2O_2不同浓度及不同作用时间对ESF-1 活性的影响 | 第31-33页 |
| 3.2 UV(UVA+UVB)不同照射时间对ESF-1 活性的影响 | 第33-34页 |
| 4 小结与讨论 | 第34-36页 |
| 第三章 杜仲抗衰老活性成分的筛选 | 第36-44页 |
| 1 材料与仪器设备 | 第36-37页 |
| 1.1 材料 | 第36页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第36-37页 |
| 2 方法 | 第37-38页 |
| 2.1 药物配制 | 第37页 |
| 2.2 ESF-1 细胞株的体外培养 | 第37页 |
| 2.3 细胞损伤模型的建立 | 第37-38页 |
| 2.4 实验分组 | 第38页 |
| 2.5 MTT法检测细胞活性 | 第38页 |
| 2.6 统计学处理 | 第38页 |
| 3 结果 | 第38-42页 |
| 3.1 不同单体化合物对H_2O_2损伤ESF-1 活性的影响 | 第38-40页 |
| 3.2 不同单体化合物对UV损伤ESF-1 活性的影响 | 第40-42页 |
| 4 小结与讨论 | 第42-44页 |
| 第四章 活性化合物对H_2O_2损伤ESF-1 的保护作用及其机制研究 | 第44-72页 |
| 1 材料与仪器设备 | 第44-45页 |
| 1.1 材料 | 第44页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第44-45页 |
| 2 方法 | 第45-52页 |
| 2.1 药物配制 | 第45页 |
| 2.2 ESF-1 细胞株的体外培养 | 第45页 |
| 2.3 细胞损伤模型的建立 | 第45页 |
| 2.4 实验分组 | 第45页 |
| 2.5 SA-β-Gal染色法检测细胞衰老情况 | 第45-46页 |
| 2.6 MTT法检测细胞增殖活性 | 第46页 |
| 2.7 试剂盒法检测细胞中 SOD 活性和 MDA 含量 | 第46-48页 |
| 2.8 ELISA法检测细胞上清液中COL1、MMP-1 及TIMP-1 的含量 | 第48-52页 |
| 2.9 统计学处理 | 第52页 |
| 3 结果 | 第52-68页 |
| 3.1 SA-β-Gal染色法检测药物预保护对细胞衰老的影响 | 第52-54页 |
| 3.2 对H_2O_2损伤ESF-1 增殖活性的影响 | 第54-58页 |
| 3.3 药物预保护对H_2O_2损伤ESF-1 细胞SOD活性的影响 | 第58-60页 |
| 3.4 药物预保护对H_2O_2损伤ESF-1 细胞MDA含量的影响 | 第60-62页 |
| 3.5 药物预保护对H_2O_2损伤ESF-1 细胞上清液中COL1含量的影响 | 第62-64页 |
| 3.6 药物预保护对H_2O_2损伤ESF-1 细胞上清液中MMP-1 含量的影响 | 第64-66页 |
| 3.7 药物预保护对H_2O_2损伤ESF-1 细胞上清液中TIMP-1 含量的影响 | 第66-68页 |
| 4 小结与讨论 | 第68-72页 |
| 第五章 活性化合物对UV(UVA+UVB)损伤ESF-1 的保护作用及其机制研究 | 第72-92页 |
| 1 材料与仪器设备 | 第72页 |
| 1.1 材料 | 第72页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第72页 |
| 2 方法 | 第72-73页 |
| 2.1 药物配制 | 第72页 |
| 2.2 ESF-1 细胞株的体外培养 | 第72页 |
| 2.3 细胞损伤模型的建立 | 第72页 |
| 2.4 实验分组 | 第72页 |
| 2.5 SA-β-Gal染色法检测细胞衰老情况 | 第72页 |
| 2.6 MTT法检测细胞活性 | 第72页 |
| 2.7 试剂盒法检测细胞中SOD活性和MDA含量 | 第72页 |
| 2.8 ELISA法检测细胞上清液中COL1、MMP-1 及TIMP-1 含量 | 第72-73页 |
| 2.9 统计学处理 | 第73页 |
| 3 结果 | 第73-88页 |
| 3.1 SA-β-Gal染色法检测药物预保护对细胞衰老的影响 | 第73-75页 |
| 3.2 对UV损伤ESF-1 增殖活性的影响 | 第75-78页 |
| 3.3 药物预保护对UV损伤ESF-1 细胞SOD活性的影响 | 第78-80页 |
| 3.4 药物预保护对UV损伤ESF-1 细胞MDA含量的影响 | 第80-82页 |
| 3.5 药物预保护对UV损伤ESF-1 细胞上清液中COL1含量的影响 | 第82-84页 |
| 3.6 药物预保护对UV损伤ESF-1 细胞上清液中MMP-1 含量的影响 | 第84-86页 |
| 3.7 药物预保护对UV损伤ESF-1 细胞上清液中TIMP-1 含量的影响 | 第86-88页 |
| 4 小结与讨论 | 第88-92页 |
| 第六章 全文总结 | 第92-94页 |
| 致谢 | 第94-96页 |
| 参考文献 | 第96-106页 |
