| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-17页 |
| 文献综述 | 第17-58页 |
| 第一章 生物性因素抗肿瘤效果及免疫机制的研究 | 第17-58页 |
| ·机体肿瘤免疫编辑及肿瘤免疫逃逸机制的研究进展 | 第17-26页 |
| ·机体肿瘤免疫编辑 | 第17-19页 |
| ·肿瘤免疫编辑学说 | 第17-18页 |
| ·肿瘤发展过程中免疫系统对肿瘤细胞免疫原性的重塑 | 第18页 |
| ·肿瘤细胞对NK 细胞功能的免疫重塑 | 第18-19页 |
| ·肿瘤免疫逃逸机制 | 第19-26页 |
| ·免疫抑制细胞 | 第19-22页 |
| ·可溶性细胞因子的肿瘤免疫抑制作用 | 第22-24页 |
| ·代谢因子功能异常导致的肿瘤免疫抑制作用 | 第24页 |
| ·免疫抑制性配体的肿瘤免疫抑制作用 | 第24-25页 |
| ·缺氧环境所致肿瘤免疫抑制作用 | 第25页 |
| ·Fas/ FasL 在肿瘤免疫逃逸中的作用 | 第25页 |
| ·肿瘤细胞表面 MHC 分子异常表达 | 第25-26页 |
| ·免疫系统的抗肿瘤效应及机制 | 第26-36页 |
| ·免疫细胞的抗肿瘤效应及机制 | 第26-33页 |
| ·T 淋巴细胞抗肿瘤效应及机制 | 第26-30页 |
| ·单核巨噬细胞的抗肿瘤免疫机制 | 第30页 |
| ·NK 细胞在抗肿瘤免疫机制 | 第30-33页 |
| ·细胞因子的抗肿瘤效应及机制 | 第33-36页 |
| ·白细胞介素 | 第33-35页 |
| ·促NKT 细胞抗肿瘤作用活化因子 | 第35-36页 |
| ·干扰素 | 第36页 |
| ·肿瘤坏死因子 | 第36页 |
| ·康莱特注射液（KLT）的抗肿瘤作用及其机制研究 | 第36-44页 |
| ·康莱特的抗肿瘤活性成分 | 第36-37页 |
| ·康莱特的作用机理 | 第37-41页 |
| ·KLT 对细胞周期的影响 | 第37-38页 |
| ·KLT 诱导肿瘤细胞凋亡 | 第38-39页 |
| ·KLT 对肿瘤细胞基因表达的影响 | 第39页 |
| ·KLT 对血管生成的影响 | 第39页 |
| ·KLT 抗恶病质作用 | 第39页 |
| ·增强机体免疫功能作用的研究 | 第39-40页 |
| ·KLT 逆转多药耐药 | 第40页 |
| ·抑制端粒酶活性 | 第40-41页 |
| ·KLT 对肿瘤细胞表型及生物学行为的影响 | 第41页 |
| ·康莱特抗肿瘤作用国内外研究状况 | 第41-42页 |
| ·康莱特的临床试验 | 第42-44页 |
| ·单用KLT 治疗原发性肺癌 | 第42页 |
| ·KLT 联合化疗治疗非小细胞肺癌 | 第42页 |
| ·KLT 治疗原发性肝癌 | 第42页 |
| ·KLT 联合介入治疗原发性肝癌和原发性肺癌 | 第42-43页 |
| ·KLT 联合放射治疗(放疗)治疗恶性肿瘤 | 第43页 |
| ·联合外科手术治疗恶性肿瘤 | 第43页 |
| ·KLT 控制癌痛和提高晚期肿瘤病人生存质量作用 | 第43页 |
| ·在俄罗斯进行的Ⅱ期临床研究 | 第43页 |
| ·美国Ⅲ 期临床方案预试验 | 第43-44页 |
| ·新城疫病毒的抗肿瘤作用及其机制 | 第44-56页 |
| ·新城疫弱病毒抗肿瘤作用的研究 | 第44-47页 |
| ·新城疫弱病毒对人体肿瘤的作用 | 第44-45页 |
| ·NDV 弱病毒对肿瘤细胞体外作用 | 第45页 |
| ·NDV 弱病毒对肿瘤裸鼠移植瘤的体内治疗 | 第45-46页 |
| ·NDV 弱病毒对肿瘤细胞的体内作用 | 第46-47页 |
| ·NDV 抗肿瘤作用机制 | 第47-55页 |
| ·NDV 诱导细胞因子的产生 | 第48页 |
| ·NDV 对免疫细胞的调节作用 | 第48-50页 |
| ·NDV HN 蛋白的抗肿瘤作用 | 第50-52页 |
| ·NDV 对肿瘤细胞的选择性杀伤作用 | 第52页 |
| ·NDV 修饰的肿瘤疫苗激发机体细胞免疫 | 第52-53页 |
| ·NDV 与体液免疫 | 第53-54页 |
| ·NDV 与细胞因子 | 第54-55页 |
| ·NDV 与肿瘤细胞表面受体 | 第55页 |
| ·NDV 给药途径 | 第55页 |
| ·NDV 弱病毒对肿瘤作用的安全性 | 第55-56页 |
| ·苦马豆素（SW）的抗肿瘤作用及其机制 | 第56-58页 |
| 试验部分 | 第58-135页 |
| 第二章 胚胎鼠中脑组织的培养及康莱特注射液对其生长的影响 | 第58-68页 |
| ·材料与方法 | 第58-62页 |
| ·材料和设备 | 第58-59页 |
| ·试验方法 | 第59-62页 |
| ·中脑神经组织培养 | 第59页 |
| ·胚胎鼠中脑神经组织培养步骤 | 第59-60页 |
| ·KLT 对小鼠中脑神经组织的作用 | 第60页 |
| ·多巴胺能神经元的鉴定 | 第60-61页 |
| ·帕金森症模型复制及KLT 对其中脑组织的影响 | 第61页 |
| ·数据分析 | 第61-62页 |
| ·结果 | 第62-65页 |
| ·中脑组织的生长状态观察 | 第62-63页 |
| ·KLT 对TH+细胞的作用 | 第63-64页 |
| ·KLT 对MPP+作用后对中脑组织的改善作用 | 第64-65页 |
| ·KLT 作用后细胞形态学变化 | 第64-65页 |
| ·KLT 作用对多巴胺能神经元的影响 | 第65页 |
| ·讨论 | 第65-67页 |
| ·小结 | 第67-68页 |
| 第三章 康莱特注射液对中脑组织和神经母细胞瘤N18TG2 的作用 | 第68-90页 |
| ·材料与方法 | 第68-72页 |
| ·材料和设备 | 第68-69页 |
| ·试验方法 | 第69-72页 |
| ·中脑神经组织培养 | 第69页 |
| ·小鼠神经母细胞瘤N18TG2 细胞培养 | 第69-71页 |
| ·神经母细胞瘤N18TG2 与中脑组织共培养 | 第71页 |
| ·KLT 作用于共培养后神经母细胞瘤N18TG2 的变化 | 第71页 |
| ·KLT 作用于共培养后中脑神经组织的变化 | 第71页 |
| ·多巴胺能神经元、神经胶质细胞和神经元的鉴定 | 第71-72页 |
| ·数据分析 | 第72页 |
| ·结果 | 第72-84页 |
| ·神经母细胞瘤在NBT 培养基中的生长状态 | 第72-74页 |
| ·N18TG2 在生长过程中的形态表现 | 第72-73页 |
| ·各接种浓度N18TG2 神经母细胞瘤的生长变化 | 第73-74页 |
| ·神经母细胞瘤N18TG2 在N4 培养基中的生长状态 | 第74-76页 |
| ·N18TG2 在生长过程中的形态表现 | 第74-75页 |
| ·N18TG2 神经母细胞瘤在NBT 和N4 培养基中的生长比较 | 第75-76页 |
| ·KLT 对神经母细胞瘤N18TG2 的抗肿瘤作用 | 第76-78页 |
| ·KLT 对NBT 培养基中的N18TG2 神经母细胞瘤的抗肿瘤作用 | 第76页 |
| ·KLT 对N4 培养基中N18TG2 的抗肿瘤作用 | 第76-78页 |
| ·神经母细胞瘤N18TG2 与中脑组织共培养 | 第78-79页 |
| ·神经母细胞瘤在共培养状态下的生长状况 | 第78-79页 |
| ·神经母细胞瘤细胞在共培养状态下的数量变化 | 第79页 |
| ·KLT 对与中脑组织共培养的神经母细胞瘤N18TG2 抗肿瘤作用 | 第79-80页 |
| ·KLT 在共培养状态下抗N18TG2 瘤细胞形态变化 | 第79-80页 |
| ·N18TG2 瘤细胞在KLT 作用下的变化 | 第80页 |
| ·KLT 抗肿瘤对中脑组织的作用 | 第80-84页 |
| ·KLT 在抗肿瘤过程中对多巴胺能神经元的保护作用 | 第80-82页 |
| ·KLT 在抗肿瘤过程中对神经元的保护作用 | 第82-83页 |
| ·KLT 在抗肿瘤过程中对神经胶质细胞的保护作用 | 第83-84页 |
| ·讨论 | 第84-88页 |
| ·神经母细胞瘤N18TG2 在NBT 培养基和N4 培养基生长意义 | 第84-85页 |
| ·KLT 对神经母细胞瘤N18TG2 在不同培养基中的抗肿瘤效果 | 第85页 |
| ·神经母细胞瘤N18TG2 与中脑组织共培养的意义 | 第85-86页 |
| ·KLT 作用于共培养中神经母细胞瘤N18TG2 的抗肿瘤效果及意义 | 第86-87页 |
| ·KLT 对共培养中中脑组织的影响 | 第87-88页 |
| ·小结 | 第88-90页 |
| 第四章 NDV 弱毒与康莱特注射液联用对小白鼠移植性肿瘤S_(37)的影响 | 第90-112页 |
| ·材料与方法 | 第90-93页 |
| ·瘤株和试验动物 | 第90页 |
| ·病毒、药品及试剂 | 第90-91页 |
| ·主要仪器设备 | 第91页 |
| ·病毒疫苗的制备 | 第91页 |
| ·NDV 弱毒血凝价的测定 | 第91页 |
| ·肿瘤模型的建立 | 第91-92页 |
| ·试验分组及用药 | 第92页 |
| ·取材、HE 染色及免疫组织化学SP 法程序 | 第92-93页 |
| ·取材 | 第92页 |
| ·组织切片的制备 | 第92页 |
| ·HE 染色 | 第92-93页 |
| ·免疫组化SP 法操作过程 | 第93页 |
| ·显微摄影及图片分析 | 第93页 |
| ·结果 | 第93-108页 |
| ·NDV 弱毒的血凝效价 | 第93页 |
| ·病理组织学变化 | 第93-97页 |
| ·免疫组化切片观察 | 第97-108页 |
| ·IL-6 在肿瘤组织中的表达 | 第98-101页 |
| ·IL-6 在大脑组织中的表达 | 第101-104页 |
| ·IL-6 在胸腺组织中的表达 | 第104-106页 |
| ·IL-6 在淋巴组织中的表达 | 第106-108页 |
| ·讨论 | 第108-111页 |
| ·小结 | 第111-112页 |
| 第五章 NDV 弱毒与苦马豆素联用对小白鼠移植性肿瘤S_(37)的影响 | 第112-135页 |
| ·材料与方法 | 第113-115页 |
| ·瘤株和试验动物 | 第113页 |
| ·病毒、药品及试剂 | 第113页 |
| ·主要仪器设备 | 第113页 |
| ·病毒疫苗的制备 | 第113-114页 |
| ·NDV 弱毒血凝价的测定 | 第114页 |
| ·肿瘤模型的建立 | 第114页 |
| ·试验分组及用药 | 第114页 |
| ·动物临床症状观察 | 第114页 |
| ·取材、HE 染色及免疫组织化学SP 法程序 | 第114-115页 |
| ·显微摄影及图片分析 | 第115页 |
| ·结果 | 第115-130页 |
| ·NDV 弱毒的血凝效价 | 第115页 |
| ·荷瘤小鼠生存状况观察结果 | 第115页 |
| ·病理组织学观察 | 第115-119页 |
| ·免疫组化切片观察 | 第119-130页 |
| ·IL-6 在瘤组织中的表达 | 第119-123页 |
| ·IL-6 在大脑组织中的表达 | 第123-125页 |
| ·IL-6 在胸腺组织中的表达 | 第125-127页 |
| ·IL-6 在淋巴组织中的表达 | 第127-130页 |
| ·讨论 | 第130-134页 |
| ·各组在不同时期生长状态比较 | 第130页 |
| ·病理组织学观察（HE 染色法）结果分析 | 第130-131页 |
| ·病理组织学观察（免疫组化法）结果分析 | 第131-134页 |
| ·同期不同组间比较分布情况结果分析 | 第131-132页 |
| ·同组不同时期比较结果分析 | 第132-133页 |
| ·NDV 的免疫学作用 | 第133-134页 |
| ·SW 的免疫学作用 | 第134页 |
| ·小结 | 第134-135页 |
| 结论 | 第135-136页 |
| 参考文献 | 第136-159页 |
| 致谢 | 第159-161页 |
| 作者简介 | 第161页 |
