| 中文摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 1 引言 | 第10-23页 |
| 1.1 水稻花器官形态结构 | 第10-14页 |
| 1.1.1 水稻小穗结构特征 | 第10-12页 |
| 1.1.2 水稻小穗发育过程 | 第12-14页 |
| 1.2 花器官发育分子调控机制 | 第14-19页 |
| 1.2.1 拟南芥花器官发育的ABCDE模型和四聚体模型 | 第14-17页 |
| 1.2.2 调控水稻花器官发育相关基因的研究 | 第17-19页 |
| 1.3 水稻E类基因研究进展 | 第19-22页 |
| 1.4 本研究的目的意义 | 第22-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-43页 |
| 2.1 材料 | 第23-24页 |
| 2.1.1 水稻材料 | 第23页 |
| 2.1.2 菌株 | 第23页 |
| 2.1.3 质粒载体 | 第23页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第23-24页 |
| 2.2 方法 | 第24-43页 |
| 2.2.1 表型观察 | 第24页 |
| 2.2.2 石蜡切片 | 第24-25页 |
| 2.2.3 扫描电镜观察 | 第25页 |
| 2.2.4 荧光定量PCR | 第25-27页 |
| 2.2.5 组织mRNA原位杂交 | 第27-37页 |
| 2.2.5.1 植物材料的固定、包埋和制片 | 第27-28页 |
| 2.2.5.2 RNA探针的地高辛标记 | 第28-31页 |
| 2.2.5.3 原位杂交 | 第31-37页 |
| 2.2.6 酵母双杂交 | 第37-40页 |
| 2.2.6.1 感受态细胞的制备 | 第37-38页 |
| 2.2.6.2 酵母转化 | 第38页 |
| 2.2.6.3 自激活作用的检测 | 第38页 |
| 2.2.6.4 蛋白质相互作用的检测 | 第38-40页 |
| 2.2.7 常规分子生物学及遗传学实验方法 | 第40-43页 |
| 2.2.7.1 CTAB法提取水稻总DNA | 第40页 |
| 2.2.7.2 质粒DNA提取 | 第40-41页 |
| 2.2.7.3 DNA凝胶回收 | 第41-42页 |
| 2.2.7.4 OsMADS5原位杂交载体的构建 | 第42页 |
| 2.2.7.5 相关基因酵母载体的构建 | 第42页 |
| 2.2.7.6 遗传学分析 | 第42-43页 |
| 3 结果与分析 | 第43-56页 |
| 3.1 OSMADS5-3单突变表型及OSMADS5表达模式分析 | 第44-46页 |
| 3.2 OSMADS5加强OSMADS1的功能冗余控制雄蕊和心皮的发育 | 第46-48页 |
| 3.3 OSMADS5和OSMADS34冗余调控水稻内轮花器官的发育 | 第48-50页 |
| 3.4 OSMADS1、OSMADS5、OSMADS34共同决定水稻花分生组织 | 第50-51页 |
| 3.5 OSMADS1、OSMADS5和OSMADS34转录水平上的调控关系 | 第51-53页 |
| 3.6 OSMADS1、OSMADS5、OSMADS34及B、C类蛋白相互作用 | 第53-56页 |
| 4 讨论 | 第56-59页 |
| 4.1 OSMADS5的功能分析 | 第56页 |
| 4.2 OSMADS1、OSMADS5和OSMADS34共同调控水稻花器官发育 | 第56-57页 |
| 4.3 E类基因同B、C类基因共同调控浆片、雄蕊的发育 | 第57-58页 |
| 4.4 E类基因冗余调控水稻花器官发育 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-66页 |
| 附录 | 第66-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
