| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 缩略语表（Abbreviation） | 第11-14页 |
| 第1章 文献综述 | 第14-34页 |
| 1.1 Micro RNA研究概况 | 第14-27页 |
| 1.1.1 Micro RNA简介 | 第14页 |
| 1.1.2 miRN A的命名法则 | 第14-15页 |
| 1.1.3 miRN A的生物合成 | 第15-16页 |
| 1.1.4 miRN A的作用机制 | 第16-17页 |
| 1.1.5 miRN A在RIG-I和TLR通路中的作用 | 第17-21页 |
| 1.1.6 miRN A通过靶向RN A病毒基因组调节RNA病毒的复制 | 第21-24页 |
| 1.1.7 miRN A通过靶向机体抗病毒信号分子调控RNA病毒感染 | 第24-27页 |
| 1.2 MAVS在抗病毒天然免疫信号通路中的作用研究进展 | 第27-34页 |
| 1.2.1 MAVS简介 | 第27页 |
| 1.2.2 MAVS分子结构与亚细胞定位 | 第27-28页 |
| 1.2.3 调控MAVS表达的分子机制 | 第28-30页 |
| 1.2.4 MAVS抗病毒信号通路的活化 | 第30页 |
| 1.2.5 MAVS在RIG-I信号通路的作用 | 第30-33页 |
| 1.2.6 MAVS在TLR信号通路的作用 | 第33-34页 |
| 第2章 研究目的及意义 | 第34-35页 |
| 第3章 材料与方法 | 第35-54页 |
| 3.1 实验材料 | 第35-42页 |
| 3.1.1 毒株、细胞与菌株 | 第35页 |
| 3.1.2 载体与质粒 | 第35-37页 |
| 3.1.3 主要药品及试剂 | 第37-38页 |
| 3.1.4 主要培养基及其配制 | 第38-39页 |
| 3.1.5 重要仪器和设备 | 第39页 |
| 3.1.6 主要缓冲液及其配制 | 第39-41页 |
| 3.1.7 分子生物学分析软件 | 第41-42页 |
| 3.2 实验方法 | 第42-54页 |
| 3.2.1 质粒的构建 | 第42-46页 |
| 3.2.2 细胞培养与处理 | 第46页 |
| 3.2.3 荧光定量PCR检测基因mRN A和miRNA水平 | 第46-48页 |
| 3.2.4 Western blot分析 | 第48-50页 |
| 3.2.5 双荧光素酶报告实验 | 第50页 |
| 3.2.6 病毒滴度测定 | 第50-51页 |
| 3.2.7 统计学分析 | 第51-54页 |
| 第4章 结果与分析 | 第54-73页 |
| 4.1 Poly(I:C)显著诱导miR-22 的上调表达 | 第54-55页 |
| 4.2 miR-22 负调控poly(I:C )诱导的I型干扰素和炎性细胞因子的表达 | 第55-59页 |
| 4.3 miR-22 靶向MAVS | 第59-61页 |
| 4.4 Poly(I:C)处理细胞抑制MAVS的表达 | 第61-63页 |
| 4.5 miR-22 通过靶向MAVS负调控poly(I:C)诱导的I型干扰素和炎症因子的表达 | 第63-66页 |
| 4.6 miR-22 抑制MAVS下游的干扰素通路 | 第66-71页 |
| 4.7 JEV感染细胞上调miR-22 的表达同时抑制MAVS的表达 | 第71-73页 |
| 第5章 讨论 | 第73-77页 |
| 5.1 Poly(I:C)诱导miR-22 的上调表达 | 第73-74页 |
| 5.2 miR-22 负调控poly(I:C )诱导的I型干扰素和炎症因子的表达 | 第74-76页 |
| 5.3 miR-22 促进JEV在U251细胞上复制 | 第76-77页 |
| 结论 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-95页 |
| 附录 | 第95-97页 |
| 致谢 | 第97-99页 |
