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利用CYP86MF反义基因转化创建青花菜与芥蓝雄性不育植株的研究

缩写词第10-12页
摘要第12-14页
Abstract第14页
0 前言第17-19页
1 文献综述第19-37页
    1.1 芸薹属植物转基因研究第19-28页
        1.1.1 高频再生体系的建立第19-21页
            1.1.1.1 基因型第19页
            1.1.1.2 外植体第19-20页
            1.1.1.3 培养基组成第20-21页
        1.1.2 转化方法第21-23页
            1.1.2.1 DNA直接转化第21页
            1.1.2.2 农杆菌介导转化第21-23页
        1.1.3 目的基因的研究第23-27页
            1.1.3.1 抗除草剂第23页
            1.1.3.2 抗虫第23页
            1.1.3.3 抗病性第23-24页
            1.1.3.4 品质改良第24页
            1.1.3.5 自交不亲和性第24页
            1.1.3.6 雄性不育性第24-27页
        1.1.4 存在的问题第27-28页
            1.1.4.1 转基因技术对农产品本身品质的影响第27页
            1.1.4.2 转基因植物环境安全性第27-28页
            1.1.4.3 转基因植物的食品安全性第28页
    1.2 反义基因研究进展第28-30页
        1.2.1 反义基因的概念第28页
        1.2.2 反义基因的作用原理第28-29页
        1.2.3 反义基因在植物学研究上的应用第29-30页
            1.2.3.1 成熟控制第29页
            1.2.3.2 抗病性第29-30页
            1.2.3.3 改良品质第30页
            1.2.3.4 雄性不育第30页
    1.3 双向电泳在植物上的应用概况第30-37页
        1.3.1 差异蛋白质组学研究的意义第32-33页
            1.3.1.1 技术上有更高的可实现性第32页
            1.3.1.2 反映了蛋白质的动态本质第32-33页
            1.3.1.3 具有广泛和明确的应用前景第33页
        1.3.2 差异蛋白质组学研究技术进展第33-35页
            1.3.2.1 样品制备第33页
            1.3.2.2 样品分离第33-34页
            1.3.2.3 样品检测与分析第34页
            1.3.2.4 蛋白质组生物信息学第34-35页
        1.3.3 差异蛋白质组学在植物学研究上的应用现状第35-37页
2 青花菜与芥蓝高频再生体系构建第37-47页
    2.1 材料与方法第37-39页
        2.1.1 实验材料第37页
        2.1.2 培养基组成和培养条件第37页
        2.1.3 芽诱导和生根培养第37-39页
    2.2 结果与分析第39-45页
        2.2.1 生长调节剂对青花菜与芥蓝再生体系的影响第39-42页
        2.2.2 AgNO_3对青花菜与芥蓝再生体系的影响第42-43页
        2.2.3 蔗糖浓度对青花菜与芥蓝再生体系的影响第43-44页
        2.2.4 外植体类型对青花菜与芥蓝再生体系的影响第44-45页
        2.2.5 影响青花菜与芥蓝生根的因素第45页
    2.3 讨论第45-47页
3 芥蓝不定芽发生的基因表达差异的cDNA-AFLP与双向电泳分析第47-63页
    3.1 材料与方法第47-54页
        3.1.1 植物材料第47页
        3.1.2 试剂第47-48页
        3.1.3 cDNA-AFLP技术第48-52页
            3.1.3.1 RNA的分离与检测第48-49页
            3.1.3.2 cDNA的合成第49-50页
            3.1.3.3 cDNA酶切、连接第50-51页
            3.1.3.4 模板的预扩增和选择性扩增第51页
            3.1.3.5 测序胶电泳第51-52页
            3.1.3.6 银染方法第52页
        3.1.4 双向电泳技术第52-54页
            3.1.4.1 蛋白质提取第52页
            3.1.4.2 溶液配制第52-53页
            3.1.4.3 蛋白质含量测定第53页
            3.1.4.4 等电聚焦电泳第53页
            3.1.4.5 聚丙烯酰胺凝胶电泳第53页
            3.1.4.6 银染方法第53-54页
    3.2 结果与分析第54-61页
        3.2.1 cDNA-AFLP分析第54-55页
            3.2.1.1 RNA提取和检测第54页
            3.2.1.2 cDNA合成第54-55页
            3.2.1.3 cDNA-AFLP技术对芥蓝不定芽发生基因差异的分析第55页
        3.2.2 双向电泳分析第55-61页
            3.2.2.1 蛋白质提取第55-57页
            3.2.2.2 双向电泳参数优化第57-58页
            3.2.2.3 芥蓝不定芽发生的基因表达差异的双向电泳分析第58-61页
    3.3 讨论第61-63页
4 青花菜与芥蓝遗传转化体系构建第63-75页
    4.1 材料与方法第63-66页
        4.1.1 植物材料、菌株及抗生素第63页
        4.1.2 培养基第63-64页
            4.1.2.1 预培养基第63-64页
            4.1.2.2 共培养基第64页
            4.1.2.3 分化培养基第64页
            4.1.2.4 生根培养基第64页
        4.1.3 实验设计与方法第64-66页
        4.1.4 青花菜与芥蓝转化植株的获得第66页
    4.2 结果与分析第66-72页
        4.2.1 主效应分析第66页
        4.2.2 单因子效应分析第66-71页
            4.2.2.1 预培养时间单因子分析第67-68页
            4.2.2.2 共培养时间单因子分析第68页
            4.2.2.3 感染时间单因子分析第68-69页
            4.2.2.4 Kan浓度单因子分析第69页
            4.2.2.5 Amp浓度单因子分析第69-71页
        4.2.3 青花菜与芥蓝反义CYP86MF片段转化植株的获得第71-72页
    4.3 讨论第72-75页
        4.3.1 外植体预培养对遗传转化的影响第72页
        4.3.2 共培养对遗传转化的影响第72-73页
        4.3.3 感染时间、Kan筛选浓度及抑菌剂浓度对遗传转化的影响第73-75页
5 CYP86MF反义基因转化植株的分子检测第75-83页
    5.1 材料与方法第75-77页
        5.1.1 植物材料第75页
        5.1.2 基因组DNA和总RNA的提取第75-76页
        5.1.3 PCR检测第76-77页
        5.1.4 Southern印迹杂交检测第77页
        5.1.5 Northern印迹杂交检测第77页
        5.1.6 X-Gluc组织化学染色检测第77页
    5.2 结果与分析第77-81页
        5.2.1 基因组DNA和总RNA的提取第77-78页
        5.2.2 PCR检测第78页
        5.2.3 Southern印迹杂交检测第78页
        5.2.4 Northern印迹杂交检测第78-81页
        5.2.5 X-Gluc组织化学染色检测第81页
    5.3 讨论第81-83页
6 CYP86MF反义基因转化获得雄性不育植株育性观察第83-87页
    6.1 材料与方法第83-84页
        6.1.1 植物材料第83页
        6.1.2 花器官的形态学观察第83页
        6.1.3 小孢子的形态学观察第83-84页
        6.1.4 花粉萌发实验第84页
    6.2 结果与分析第84-86页
        6.2.1 花器官的形态学观察第84-85页
        6.2.2 小孢子的形态学观察第85页
        6.2.3 花粉萌发实验第85-86页
    6.3 讨论第86-87页
7 人工雄性不育植株和核不育两用系的双向电泳比较分析第87-97页
    7.1 材料与方法第87-89页
        7.1.1 植物材料第87页
        7.1.2 设备和试剂第87-88页
        7.1.3 溶液配制第88页
        7.1.4 蛋白质含量测定第88页
        7.1.5 等电聚焦电泳第88页
        7.1.6 聚丙烯酰胺凝胶电泳第88页
        7.1.7 银染方法第88-89页
    7.2 结果与分析第89-94页
        7.2.1 蛋白质提取比较第89-90页
        7.2.2 转基因材料与非转基因材料的双向电泳比较分析第90-92页
        7.2.3 核雄性不育两用系可育株与不育株双向电泳比较分析第92-94页
    7.3 讨论第94-97页
        7.3.1 蛋白质的提取第94-95页
        7.3.2 双向电泳技术参数的优化第95页
        7.3.3 植物小孢子形成和花粉发育的相关蛋白第95-97页
结论第97-99页
参考文献第99-109页
博士期间发表的论文及论著第109-110页

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