| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 1 绪论 | 第12-22页 |
| 1.1 聚乙烯塑料污染的现状 | 第12页 |
| 1.2 废弃聚乙烯塑料的处理方法 | 第12-14页 |
| 1.2.1 目前聚乙烯塑料污染问题的解决办法 | 第12-13页 |
| 1.2.2 光降解途径 | 第13页 |
| 1.2.3 热裂解途径 | 第13-14页 |
| 1.2.4 微生物降解 | 第14页 |
| 1.3 生物降解聚乙烯塑料 | 第14-17页 |
| 1.3.1 聚乙烯的降解菌 | 第14-15页 |
| 1.3.2 聚乙烯塑料的降解条件、过程和机理 | 第15-16页 |
| 1.3.3 聚乙烯降解特性的研究方法 | 第16-17页 |
| 1.4 诱变育种概述 | 第17-19页 |
| 1.4.1 物理诱变方法及原理 | 第18页 |
| 1.4.2 化学诱变方法及原理 | 第18-19页 |
| 1.4.3 复合诱变方法及原理 | 第19页 |
| 1.4.4 生物诱变 | 第19页 |
| 1.5 转录组测序技术概述 | 第19-20页 |
| 1.5.1 转录组与转录组测序技术简介 | 第19-20页 |
| 1.5.2 转录组测序的研究方法 | 第20页 |
| 1.5.3 转录组测序在生物降解研究中的应用 | 第20页 |
| 1.6 本研究目的与技术路线 | 第20-22页 |
| 1.6.1 研究目的 | 第20-21页 |
| 1.6.2 研究意义和创新点 | 第21页 |
| 1.6.3 研究主要内容和技术路线 | 第21-22页 |
| 2 聚乙烯降解菌的筛选、鉴定及其降解特性研究 | 第22-43页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-25页 |
| 2.1.1 菌种来源 | 第22页 |
| 2.1.2 培养基 | 第22-23页 |
| 2.1.3 仪器和药品 | 第23-25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-30页 |
| 2.2.1 菌株的分离纯化 | 第25页 |
| 2.2.2 菌株理化性质鉴定 | 第25-26页 |
| 2.2.3 16S rDNA鉴定 | 第26页 |
| 2.2.4 菌株ZEL-1 降解效果研究——培养液组分研究 | 第26-29页 |
| 2.2.5 菌株ZEL-1 降解效果研究——残留固体聚乙烯性能测定 | 第29-30页 |
| 2.2.6 数据处理 | 第30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-42页 |
| 2.3.1 菌株理化性质鉴定 | 第30-31页 |
| 2.3.2 16S rDNA的扩增 | 第31-32页 |
| 2.3.3 菌株降解特性研究——培养液成分测定 | 第32-37页 |
| 2.3.4 菌株降解特性研究——残留固体PE性能测定 | 第37-42页 |
| 2.4 本章小结 | 第42-43页 |
| 3 Amycolatopsis orientalis ZEL-1 的诱变育种 | 第43-53页 |
| 3.1 实验材料与仪器设备 | 第43页 |
| 3.1.1 菌株 | 第43页 |
| 3.1.2 实验药品和仪器 | 第43页 |
| 3.1.3 培养基 | 第43页 |
| 3.2 实验方法 | 第43-46页 |
| 3.2.1 出发菌株培养和菌悬液制备 | 第43-44页 |
| 3.2.2 紫外诱变 | 第44页 |
| 3.2.3 微波诱变 | 第44页 |
| 3.2.4 吖啶橙诱变 | 第44-45页 |
| 3.2.5 LiCl诱变 | 第45页 |
| 3.2.6 盐酸羟胺诱变 | 第45页 |
| 3.2.7 复合诱变 | 第45-46页 |
| 3.2.8 复筛 | 第46页 |
| 3.2.9 优势菌株降解性性能测定 | 第46页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第46-52页 |
| 3.3.1 致死率和正突变率统计 | 第46-49页 |
| 3.3.2 复筛结果统计 | 第49页 |
| 3.3.3 优势菌株的筛选结果统计 | 第49-51页 |
| 3.3.4 优势菌株与原始菌株降解性能比较 | 第51-52页 |
| 3.4 本章小结 | 第52-53页 |
| 4 Amycolatopsis orientalis ZEL-1 的转录组测序以及聚乙烯降解关键酶和主要代谢通路研究 | 第53-86页 |
| 4.1 实验材料 | 第53-54页 |
| 4.1.1 菌株 | 第53页 |
| 4.1.2 培养基 | 第53页 |
| 4.1.3 药品与耗材 | 第53-54页 |
| 4.1.4 仪器设备 | 第54页 |
| 4.2 实验方法 | 第54-61页 |
| 4.2.1 样品准备 | 第54页 |
| 4.2.2 转录组建库、上机流程 | 第54-56页 |
| 4.2.3 原始数据质量控制 | 第56页 |
| 4.2.4 与参考基因组比对以及GO功能、CGO分类、KEGG通路注释 | 第56-57页 |
| 4.2.5 基因表达量分析 | 第57页 |
| 4.2.6 不同碳源的G组和W组基因表达差异分析 | 第57-58页 |
| 4.2.7 荧光定量PCR验证转录组基因表达差异 | 第58-61页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第61-85页 |
| 4.3.1 RNA提取质检结果 | 第61-62页 |
| 4.3.2 测序数据质量控制统计 | 第62-63页 |
| 4.3.3 与参考基因组序列比对结果统计 | 第63-64页 |
| 4.3.4 转录组整体质量评估 | 第64-65页 |
| 4.3.5 GO、COG、KEGG通路注释结果统计 | 第65-69页 |
| 4.3.6 基因表达量分析 | 第69-70页 |
| 4.3.7 不同碳源组的基因表达差异分析 | 第70-77页 |
| 4.3.8 菌株ZEL-1 降解聚乙烯的关键基因和代谢通路分析 | 第77-83页 |
| 4.3.9 荧光定量PCR验证转录组基因表达差异结果 | 第83-85页 |
| 4.4 本章小结 | 第85-86页 |
| 5 总结与展望 | 第86-88页 |
| 参考文献 | 第88-96页 |
| 附录 | 第96-112页 |
| 致谢 | 第112-113页 |
| 在校期间的研究成果 | 第113页 |
