| 中英文缩略语对照 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-14页 |
| 英文摘要 | 第14-17页 |
| 论文正文一 血清MIRNAS用于乳腺癌早期诊断中的表达谱分析 | 第19-67页 |
| 前言 | 第19-22页 |
| 1 miRNA的生物合成及功能 | 第19-20页 |
| 2 循环miRNA与肿瘤诊治的相关性 | 第20页 |
| 3 血浆和血清miRNA与肿瘤的诊断 | 第20-21页 |
| 4 本课题的研究内容及意义 | 第21-22页 |
| 第一章 实验仪器与方法 | 第22-48页 |
| 第一节 实验仪器 | 第22-24页 |
| 第二节 实验材料 | 第24-29页 |
| 1 菌株、细胞系、载体与肿瘤标本 | 第24页 |
| 2 实验试剂 | 第24-26页 |
| 3 实验相关试剂的配制 | 第26-29页 |
| 第三节 实验方法 | 第29-48页 |
| 1 样本的收集 | 第29-31页 |
| 2 Affymetrix miRNA表达谱芯片检测 | 第31-32页 |
| 3 样本初筛与复筛 | 第32-33页 |
| 4 数据分析 | 第33页 |
| 5 细胞培养 | 第33-34页 |
| 6 Western Blot | 第34-37页 |
| 7 RT-PCR和Real-time PCR | 第37-38页 |
| 8 细胞转染 | 第38-39页 |
| 9 细胞侵袭和划痕实验 | 第39页 |
| 10 双荧光报告系统质粒的构建 | 第39-41页 |
| 11 双荧光报告分析实验 | 第41-42页 |
| 12 细胞平板克隆形成实验 | 第42页 |
| 13 Lentivirus慢病毒包装 | 第42-43页 |
| 14 Lentivirus病毒的感染 | 第43-44页 |
| 15 稳定细胞系的筛选 | 第44页 |
| 16 CCK8实验 | 第44页 |
| 17 细胞增殖实验（EdU）检测 | 第44-46页 |
| 18 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第46-47页 |
| 19 其他实验相关服务及供应商 | 第47-48页 |
| 第二章 实验结果 | 第48-62页 |
| 第一节 血清MICRORNA作为乳腺癌诊断标志物的表达谱的建立与验证 | 第48-54页 |
| 1 Affymetrix miRNA表达谱芯片结果 | 第48-51页 |
| 2 样本初筛 | 第51-52页 |
| 3 样本复筛 | 第52-53页 |
| 4 ROC曲线分析 | 第53-54页 |
| 第二节MIR4553P通过靶向PIK3CA影响乳腺癌细胞增殖、迁移的作用机制 | 第54-62页 |
| 1 miR4553p与BrCa恶性程度的关系 | 第54-55页 |
| 2 miR4553p对乳腺癌细胞增殖的影响 | 第55-57页 |
| 3 miR4553p对乳腺癌细胞凋亡的影响 | 第57页 |
| 4 miR4553p对乳腺癌细胞迁移的影响 | 第57-58页 |
| 5 miR4553p对目标基因和下游信号通路的影响 | 第58-62页 |
| 第三章 讨论 | 第62-64页 |
| 第四章 总结 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-67页 |
| 论文正文二 ZEB1与乳腺癌化疗耐药的关系及耐药靶基因的确定 | 第67-104页 |
| 前言 | 第67-73页 |
| 第一节 乳腺癌化疗耐药的背景介绍 | 第68-69页 |
| 1 耐药与药物外排 | 第68页 |
| 2 耐药与凋亡 | 第68-69页 |
| 3 耐药与肿瘤干细胞 | 第69页 |
| 4 耐药与DNA损伤 | 第69页 |
| 第二节 ATM与DNA损伤 | 第69-70页 |
| 1 有关DNA损伤 | 第69-70页 |
| 2 ATM的生物学结构 | 第70页 |
| 3 ATM在放化疗耐药中的作用 | 第70页 |
| 第三节 ZEB1的研究现状 | 第70-73页 |
| 1 ZEB1的结构及生物学功能 | 第70-71页 |
| 2 ZEB1在肿瘤发生发展中的作用 | 第71-73页 |
| 第一章 材料与方法 | 第73-86页 |
| 第一节 实验材料及实验试剂 | 第73-77页 |
| 1 实验设备 | 第73-74页 |
| 2 实验所用菌株、细胞系等标本 | 第74-75页 |
| 3 实验试剂及配制 | 第75-76页 |
| 4 实验相关试剂的配制（同前） | 第76-77页 |
| 第二节 实验方法 | 第77-86页 |
| 1 免疫组化 | 第77-78页 |
| 2 细胞免疫荧光 | 第78-79页 |
| 3 染色质免疫共沉淀技术 | 第79页 |
| 4 Western Blot（同前） | 第79页 |
| 5 反转PCR和Real-time PCR（同前） | 第79页 |
| 6 目的基因的Lentivirus载体构建 | 第79-83页 |
| 7 细胞培养（同前） | 第83页 |
| 8 Lentivirus病毒的包装（同前） | 第83页 |
| 9 Lentivirus病毒的感染（同前） | 第83页 |
| 10 稳定细胞系的筛选（同前） | 第83-84页 |
| 11 ChIP免疫沉淀实验 | 第84-85页 |
| 12 其他实验相关服务及供应商 | 第85-86页 |
| 第二章 实验结果 | 第86-96页 |
| 第一节 ZEB1在乳腺癌中的表达情况 | 第86-90页 |
| 1 ZEB1在不同分子分型的乳腺癌细胞系中的表达情况 | 第86-87页 |
| 2 乳腺癌细胞系中ZEB1过表达对不同化疗药物诱导DNA损伤的影响 | 第87-90页 |
| 第二节 ZEB1在临床标本中的表达情况 | 第90-92页 |
| 第三节 ZEB1下游靶基因的确定 | 第92-96页 |
| 第三章 讨论 | 第96-98页 |
| 第四章 结论 | 第98页 |
| 参考文献 | 第98-104页 |
| 综述 | 第104-112页 |
| 参考文献 | 第107-112页 |
| 致谢 | 第112-113页 |
| 攻读学位期间发表学术论文及发表的专利 | 第113页 |
