缩略语表 | 第6-8页 |
中文摘要 | 第8-12页 |
英文摘要 | 第12-15页 |
前言 | 第17-19页 |
文献回顾 | 第19-35页 |
实验一 美托洛尔对成骨细胞增殖、分化影响及相关机制的研究 | 第35-55页 |
1 材料 | 第35-37页 |
1.1 实验动物 | 第35页 |
1.2 主要试剂 | 第35-36页 |
1.3 实验设备 | 第36-37页 |
2 方法 | 第37-44页 |
2.1 大鼠成骨细胞的获取 | 第37-39页 |
2.2 美托洛尔溶液的配制 | 第39页 |
2.3 成骨细胞增殖检测 | 第39-40页 |
2.4 ALP碱性磷酸酶染色及定量 | 第40-41页 |
2.5 茜素红S染色及定量 | 第41-42页 |
2.6 实时定量荧光PCR(Real Time-PCR)检测 | 第42-44页 |
2.7 统计学分析 | 第44页 |
3 结果 | 第44-52页 |
3.1 成骨细胞的培养 | 第44-45页 |
3.2 美托洛尔对大鼠成骨细胞增殖功能的影响 | 第45页 |
3.3 美托洛尔对大鼠成骨细胞分化功能的影响 | 第45-46页 |
3.4 美托洛尔对大鼠成骨细胞矿化功能的影响 | 第46页 |
3.5 美托洛尔对大鼠成骨细胞相关基因表达的影响 | 第46-52页 |
4 讨论 | 第52-54页 |
4.1 成骨细胞的培养 | 第52-53页 |
4.2 美托洛尔对成骨细胞增殖、分化功能的影响 | 第53-54页 |
5 结论 | 第54-55页 |
实验二 美托洛尔对破骨细胞分化及活性影响的研究 | 第55-68页 |
1 材料 | 第55-56页 |
1.1 主要试剂 | 第55-56页 |
1.2 实验设备 | 第56页 |
2 方法 | 第56-61页 |
2.1 细胞培养 | 第56-58页 |
2.2 破骨细胞的鉴定 | 第58-59页 |
2.3 美托洛尔对RAW 264.7 细胞增殖能力的影响 | 第59页 |
2.4 美托洛尔对破骨细胞TRAP酶活性的影响 | 第59-60页 |
2.5 统计学分析 | 第60-61页 |
3 结果 | 第61-64页 |
3.1 破骨细胞鉴定 | 第61-63页 |
3.2 美托洛尔对RAW 264.7 细胞增殖能力的影响 | 第63-64页 |
3.3 美托洛尔对破骨细胞TRAP酶活性的影响 | 第64页 |
4 讨论 | 第64-67页 |
4.1 破骨细胞的培养和鉴定 | 第64-65页 |
4.2 美托洛尔对破骨细胞分化及活性的影响 | 第65-67页 |
5 结论 | 第67-68页 |
实验三 美托洛尔对去卵巢骨质疏松大鼠影响的研究 | 第68-89页 |
1 材料 | 第68-70页 |
1.1 实验动物 | 第68页 |
1.2 实验材料 | 第68-69页 |
1.3 实验主要仪器和器械 | 第69-70页 |
2 方法 | 第70-75页 |
2.1 去势大鼠骨质疏松模型的建立 | 第70-71页 |
2.2 动物分组处置 | 第71页 |
2.3 骨密度测定 | 第71-73页 |
2.4 生物力学测试 | 第73页 |
2.5 组织形态学观察 | 第73-74页 |
2.6 显微CT扫描 | 第74-75页 |
2.7 统计学分析 | 第75页 |
3 结果 | 第75-83页 |
3.1 去卵巢大鼠骨质疏松模型建立 | 第75页 |
3.2 骨密度测量 | 第75页 |
3.3 生物力学测试 | 第75-78页 |
3.4 组织形态学观察 | 第78-79页 |
3.5 显微CT扫描 | 第79-83页 |
4 讨论 | 第83-88页 |
4.1 骨质疏松动物模型的选择 | 第83页 |
4.2 去卵巢大鼠骨质疏松模型的评价 | 第83-84页 |
4.3 美托洛尔对去卵巢骨质疏松大鼠的影响 | 第84-87页 |
4.4 机制探讨 | 第87-88页 |
5 结论 | 第88-89页 |
小结 | 第89-90页 |
参考文献 | 第90-110页 |
个人简历和研究成果 | 第110-112页 |
致谢 | 第112-113页 |