英文缩略词表 | 第6-8页 |
中文摘要 | 第8-11页 |
英文摘要 | 第11-15页 |
1. 前言 | 第16-18页 |
2. 实验材料与方法 | 第18-37页 |
2.1. 实验材料 | 第18-26页 |
2.1.1. 实验动物 | 第18-19页 |
2.1.2. 实验仪器 | 第19-20页 |
2.1.3. 主要试剂及来源 | 第20-21页 |
2.1.4. 一般试剂及配置 | 第21-25页 |
2.1.5. H2S含量及活性检测试剂的配置 | 第25-26页 |
2.2. 实验方法 | 第26-36页 |
2.2.1. MSCs分离、培养及鉴定 | 第26-27页 |
2.2.2. MSCs缺氧/无血清培养凋亡模型的建立 | 第27-28页 |
2.2.3. CSE过表达细胞系的建立 | 第28-29页 |
2.2.4. 实验分组 | 第29-30页 |
2.2.5. PI流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第30-31页 |
2.2.6. MSCs内源性H2S含量的测定 | 第31-32页 |
2.2.7. MSCs内源性H2S活性的测定 | 第32-33页 |
2.2.8. Western blot | 第33-36页 |
2.3 统计学分析 | 第36-37页 |
3. 结果 | 第37-60页 |
3.1.大鼠MSCs培养的形态学特征及监定 | 第37-39页 |
3.2. MSCs内源性H2S及其合成酶的表达 | 第39-40页 |
3.3. 缺氧/无血清对MSCs内源性H2S水平及其合成酶CSE蛋白表达、活性的影响及与MSCs凋亡的相关性 | 第40-45页 |
3.3.1. 缺氧/无血清对MSCs凋亡的影响 | 第40-42页 |
3.3.2. 缺氧/无血清对MSCs内源性H2S水平的影响 | 第42-43页 |
3.3.3. 缺氧/无血清对MSCs内源性H2S合成酶CSE蛋白表达、活性的影响 | 第43-45页 |
3.4. 内源性H2S的改变对缺氧/无血清诱导MSCs凋亡的影响 | 第45-50页 |
3.4.1. CSE过表达对缺氧/无血清诱导MSCs凋亡及内源性H2S生成的影响 | 第45-48页 |
3.4.2. CSE抑制剂对缺氧/无血清诱导MSCs凋亡及内源性H2S生成的影响 | 第48-50页 |
3.5. 内源性H2S调节缺氧/无血清诱导MSCs凋亡的机制 | 第50-60页 |
3.5.1. CSE过表达对缺氧/无血清作用后MSCs Cyt c蛋白表达的影响 | 第51-53页 |
3.5.2. CSE过表达对缺氧/无血清作用后MSCs Bcl-2 及Bax蛋白表达的影响 | 第53-55页 |
3.5.3. CSE过表达对缺氧/无血清作用后MSCs CHOP及GRP-78蛋白表达的影响 | 第55-58页 |
3.5.4. CSE过表达对缺氧/无血清作用后P13K/Akt通路影响 ..· 534. 讨论 | 第58-60页 |
4.讨论 | 第60-66页 |
4.1 MSCs 中内源性 H2S 的生成 | 第60页 |
4.2 内源性 H2S 在缺氧/无血清诱导 MSCs 凋亡中的作用 | 第60-62页 |
4.3 内源性 H2S 在缺氧/无血清诱导 MSCs 凋亡中的作用机制 | 第62-66页 |
4.3.1 线粒体途径在内源性 H2S 调节缺氧/无血清诱导 MSCs 凋亡中的作用 | 第62-63页 |
4.3.2 内质网应激途径在内源性 H2S 调节缺氧/无血清诱导 MSCs 凋亡中的作用 | 第63-64页 |
4.3.3 P13K/Akt信号通路在内源性H2S调节缺氧/无血清诱导MSCs凋亡中的作用 | 第64-66页 |
5. 结论 | 第66-67页 |
参考文献 | 第67-77页 |
附录 | 第77-81页 |
致谢 | 第81-82页 |
综述 | 第82-97页 |
参考文献 | 第90-97页 |