| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略词表 | 第13-14页 |
| 第一章 引言 | 第14-18页 |
| 第二章 制剂学研究 | 第18-38页 |
| 1 仪器与试剂 | 第18页 |
| 1.1 仪器 | 第18页 |
| 1.2 试剂 | 第18页 |
| 2 实验方法 | 第18-23页 |
| 2.1 HMCuS NPs的合成 | 第18-19页 |
| 2.2 HMCuS NPs负载AS | 第19-21页 |
| 2.2.1 AS含量测定方法的建立 | 第19页 |
| 2.2.2 AS标准曲线的绘制 | 第19页 |
| 2.2.3 准确度实验 | 第19页 |
| 2.2.4 精密度实验 | 第19-20页 |
| 2.2.5 纳米制剂中AS的提取方法 | 第20页 |
| 2.2.6 载药率的测定 | 第20-21页 |
| 2.3 荧光淬灭法确定HMCuS NPs与Tf连接的最佳比例 | 第21页 |
| 2.4 基于HMCuS NPs的各制剂形式的表征 | 第21-22页 |
| 2.4.1 能谱分析（EDS） | 第21页 |
| 2.4.2 氮气吸附实验 | 第21页 |
| 2.4.3 透射电镜（TEM） | 第21-22页 |
| 2.4.4 紫外光谱全波长扫描（UV） | 第22页 |
| 2.4.5 粒径与电位测定 | 第22页 |
| 2.4.6 热重分析法（TGA）定量Tf | 第22页 |
| 2.5 体外释药实验 | 第22页 |
| 2.6 体外热疗 | 第22-23页 |
| 2.7 制剂的稳定性考察 | 第23页 |
| 3 实验结果 | 第23-35页 |
| 3.1 HMCuS NPs负载AS | 第23-25页 |
| 3.1.1 AS的标准曲线 | 第23-24页 |
| 3.1.2 准确度结果 | 第24页 |
| 3.1.3 精密度结果 | 第24页 |
| 3.1.4 纳米制剂中AS的提取方法 | 第24页 |
| 3.1.5 载药率 | 第24-25页 |
| 3.2 HMCuS NPs与Tf结合的最佳比例 | 第25-26页 |
| 3.3 基于HMCuS NPs的各制剂形式的表征 | 第26-31页 |
| 3.3.1 能谱分析（EDS） | 第26-27页 |
| 3.3.2 氮气吸附 | 第27页 |
| 3.3.3 透射电镜（TEM） | 第27-28页 |
| 3.3.4 紫外全波长扫描图（UV） | 第28-29页 |
| 3.3.5 粒径及电位测定 | 第29-30页 |
| 3.3.6 热重分析（TGA） | 第30-31页 |
| 3.4 体外释药 | 第31-32页 |
| 3.5 体外热疗 | 第32-33页 |
| 3.6 制剂的稳定性考察 | 第33-35页 |
| 4 本章小结与讨论 | 第35-38页 |
| 第三章 细胞学研究 | 第38-49页 |
| 1 仪器及试剂 | 第38-39页 |
| 1.1 仪器 | 第38页 |
| 1.2 试剂 | 第38-39页 |
| 1.3 主要试剂的配制 | 第39页 |
| 2 人乳腺癌细胞（MCF-7）的培养 | 第39-40页 |
| 3 实验方法 | 第40-42页 |
| 3.1 细胞摄取实验 | 第40-41页 |
| 3.1.1 FITC，FITC/HMCuS和FITC/Tf-HMCuS的制备 | 第40页 |
| 3.1.2 荧光显微镜用于定性细胞摄取 | 第40页 |
| 3.1.3 流式细胞仪用于定量细胞摄取 | 第40-41页 |
| 3.2 细胞活性氧实验 | 第41页 |
| 3.3 SRB法测定细胞抑制率 | 第41-42页 |
| 4 实验结果 | 第42-48页 |
| 4.1 细胞摄取 | 第42-44页 |
| 4.1.1 荧光显微镜观察 | 第42-43页 |
| 4.1.2 流式细胞仪定量测定 | 第43-44页 |
| 4.2 细胞活性氧 | 第44-46页 |
| 4.3 细胞抑制率 | 第46-48页 |
| 5 本章小结与讨论 | 第48-49页 |
| 第四章 制剂的体内活性研究 | 第49-80页 |
| 1 仪器与试剂 | 第49-50页 |
| 1.1 仪器 | 第49页 |
| 1.2 试剂 | 第49-50页 |
| 2 荷瘤小鼠肿瘤模型的建立 | 第50页 |
| 3 实验方法 | 第50-57页 |
| 3.1 活体成像实验 | 第50-51页 |
| 3.1.1 DiR/HMCuS和DiR/Tf-HMCuS的合成 | 第50-51页 |
| 3.1.2 DiR/HMCuS和DiR/Tf-HMCuS的表征 | 第51页 |
| 3.1.3 采用静脉注射和瘤旁注射进行活体成像实验 | 第51页 |
| 3.2 光声成像实验 | 第51-52页 |
| 3.3 药效学实验 | 第52-53页 |
| 3.3.1 实验分组及数据测量 | 第52页 |
| 3.3.2 HE染色观察病理变化 | 第52-53页 |
| 3.4 制剂在小鼠体内的组织分布研究 | 第53-55页 |
| 3.4.1 高效液相色谱条件 | 第53页 |
| 3.4.2 荷瘤小鼠各组织样品的预处理 | 第53页 |
| 3.4.3 方法专属性考察 | 第53页 |
| 3.4.4 荷瘤小鼠各组织样品标准曲线的绘制 | 第53-54页 |
| 3.4.5 精密度实验 | 第54页 |
| 3.4.6 回收率实验 | 第54页 |
| 3.4.7 不同时间各器官中AS的浓度测定 | 第54-55页 |
| 3.5 免疫荧光实验 | 第55-57页 |
| 3.5.1 实验机理 | 第55页 |
| 3.5.2 R6G/HMCuS和R6G/Tf-HMCuS的合成 | 第55-56页 |
| 3.5.3 组织免疫荧光实验 | 第56-57页 |
| 4 实验结果 | 第57-78页 |
| 4.1 活体成像实验结果 | 第57-60页 |
| 4.2 光声成像实验结果 | 第60页 |
| 4.3 药效学研究结果 | 第60-67页 |
| 4.3.1 荷瘤小鼠肿瘤体积的变化 | 第60-61页 |
| 4.3.2 荷瘤小鼠体重的变化 | 第61-62页 |
| 4.3.3 各组制剂对荷瘤小鼠的肿瘤抑制率 | 第62-63页 |
| 4.3.4 HE染色结果 | 第63-67页 |
| 4.3.4.1 肿瘤组织的HE染色 | 第63-66页 |
| 4.3.4.2 正常器官（心、肝、脾、肺、肾）组织的HE染色 | 第66-67页 |
| 4.4 组织分布实验结果 | 第67-77页 |
| 4.4.1 方法专属性考察 | 第67-69页 |
| 4.4.2 AS在各组织中的标准曲线及线性范围 | 第69页 |
| 4.4.3 方法的精密度 | 第69-70页 |
| 4.4.4 回收率结果 | 第70-71页 |
| 4.4.5 不同时间点各组织内药物的分布特征 | 第71-74页 |
| 4.4.6 组织分布数据分析 | 第74-77页 |
| 4.4.6.1 给药后各组织的AUC | 第74页 |
| 4.4.6.2 AS/PT为对照组时的数据分析 | 第74-75页 |
| 4.4.6.3 AS/Tf-HMCuS/IV为对照组时的数据分析 | 第75-77页 |
| 4.5 免疫荧光实验结果 | 第77-78页 |
| 5 本章小结与讨论 | 第78-80页 |
| 第五章 全文总结 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-86页 |
| 个人简介 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87页 |
