| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 英文缩略表 | 第11-12页 |
| 第一章 引言 | 第12-20页 |
| 1.1 A型流感病毒概述 | 第12页 |
| 1.2 禽流感病毒概述 | 第12-13页 |
| 1.3 H5N1亚型高致病性禽流感病毒概述 | 第13-14页 |
| 1.4 流感病毒侵入细胞概述 | 第14-19页 |
| 1.4.1 侵入细胞与受体相关 | 第14-15页 |
| 1.4.2 受体介导病毒侵入细胞的方式 | 第15-19页 |
| 1.5 Dynamin概述 | 第19页 |
| 1.6 巨胞饮概述 | 第19-20页 |
| 第二章 材料方法 | 第20-27页 |
| 2.1 材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 病毒与细胞 | 第20页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第20页 |
| 2.1.3 仪器设备 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-27页 |
| 2.2.1 病毒TCID50的测定及纯化 | 第21-23页 |
| 2.2.2 Dynasore实验 | 第23页 |
| 2.2.3 抑制剂实验 | 第23-24页 |
| 2.2.4 唾液酸实验 | 第24-25页 |
| 2.2.5 流式细胞术 | 第25-27页 |
| 第三章 实验结果 | 第27-35页 |
| 3.1 病毒纯化电镜观察 | 第27页 |
| 3.2 Dynasore实验 | 第27-32页 |
| 3.2.1 Dynasore工作浓度的确定 | 第27-28页 |
| 3.2.2 胎牛血清存在情况下的Dynasore实验 | 第28-29页 |
| 3.2.3 A549流式细胞测定 | 第29页 |
| 3.2.4 A549、MDCK及DF1细胞的Dynasore实验 | 第29-32页 |
| 3.3 抑制剂实验 | 第32-33页 |
| 3.3.1 EIPA抑制实验 | 第32页 |
| 3.3.2 病毒感染细胞定位实验 | 第32-33页 |
| 3.4 唾液酸实验 | 第33-35页 |
| 3.4.1 A549表面SAα-2,3 和SAα-2,6 受体的分布情况 | 第33页 |
| 3.4.2 不同受体结合特性的病毒感染A549的情况 | 第33-34页 |
| 3.4.3 去除唾液酸后Dynasore实验 | 第34-35页 |
| 第四章 讨论 | 第35-38页 |
| 4.1 实验意义 | 第35页 |
| 4.2 Dynasore实验 | 第35-37页 |
| 4.2.1 Dynasore抑制作用 | 第35页 |
| 4.2.2 血清存在情况下的病毒侵入 | 第35-36页 |
| 4.2.3 EIPA验证 | 第36页 |
| 4.2.4 不同受体亲和性病毒感染 | 第36页 |
| 4.2.5 血清中的促进因素 | 第36-37页 |
| 4.3 实验操作注意事项 | 第37-38页 |
| 4.3.1 病毒纯化 | 第37页 |
| 4.3.2 Dynasore实验 | 第37页 |
| 4.3.3 流式细胞实验 | 第37-38页 |
| 第五章 全文结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 作者简历 | 第48页 |
