摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
引言 | 第12-14页 |
第1章 文献研究 | 第14-23页 |
1.1 湿热证研究发展 | 第14-19页 |
1.1.1 温病湿热证概述 | 第14页 |
1.1.2 温病湿热证与免疫功能研究 | 第14-17页 |
1.1.3 温病湿热证与氧化应激关系的研究 | 第17-18页 |
1.1.4 温病湿热症与热休克蛋白关系的研究 | 第18页 |
1.1.5 温病湿热证与水通道蛋白关系的研究 | 第18-19页 |
1.2 肠道菌群研究 | 第19-21页 |
1.2.1 肠道微生态系统 | 第19-20页 |
1.2.2 肠道免疫系统 | 第20页 |
1.2.3 肠道菌群与中医证型相关性研究 | 第20-21页 |
1.3 温病湿热证动物模型研究 | 第21-23页 |
第2章 预实验模型B组脾虚因素造模灌胃番泻叶浓度的探索 | 第23-27页 |
2.1 实验材料 | 第23页 |
2.1.1 动物 | 第23页 |
2.1.2 饲料 | 第23页 |
2.1.3 实验药物 | 第23页 |
2.1.4 实验仪器 | 第23页 |
2.2 实验方法 | 第23-24页 |
2.2.1 动物分组 | 第23页 |
2.2.2 药物浓度的制定 | 第23页 |
2.2.3 药物的稀释 | 第23-24页 |
2.2.4 实验步骤 | 第24页 |
2.2.5 观察指标 | 第24页 |
2.2.6 统计学方法 | 第24页 |
2.3 实验结果 | 第24-25页 |
2.3.1 各组小鼠体质量的动态改变 | 第24-25页 |
2.3.2 一般情况观察 | 第25页 |
2.4 讨论 | 第25-27页 |
第3章 岭南温病湿热证小鼠模型造模及相关血清炎症因子检测 | 第27-37页 |
3.1 实验材料 | 第27-28页 |
3.1.1 动物 | 第27页 |
3.1.2 饲料 | 第27页 |
3.1.3 实验药物 | 第27页 |
3.1.4 实验试剂 | 第27页 |
3.1.5 实验仪器 | 第27-28页 |
3.2 实验方法 | 第28-29页 |
3.2.1 动物分组 | 第28页 |
3.2.2 LPS工作液的配置 | 第28页 |
3.2.3 造模方法 | 第28页 |
3.2.4 样本的采集 | 第28页 |
3.2.5 观察指标 | 第28-29页 |
3.2.6 检测指标 | 第29页 |
3.2.7 统计学方法 | 第29页 |
3.3 实验结果 | 第29-35页 |
3.3.1 一般情况观察 | 第29页 |
3.3.2 体温、体重的动态变化 | 第29-31页 |
3.3.3 饮食量的观察 | 第31页 |
3.3.4 HE染色观察 | 第31-33页 |
3.3.5 各组血清LPS、TNF-α含量比较 | 第33-34页 |
3.3.6 各组结肠匀浆液TNF-α含量比较 | 第34-35页 |
3.4 讨论 | 第35-37页 |
第4章 岭南温病湿热证小鼠模型肠道菌群检测 | 第37-44页 |
4.1 实验材料 | 第37页 |
4.1.1 动物 | 第37页 |
4.1.2 饲料 | 第37页 |
4.1.3 实验药物 | 第37页 |
4.1.4 实验试剂 | 第37页 |
4.1.5 实验仪器 | 第37页 |
4.2 实验方法 | 第37-40页 |
4.2.1 动物分组 | 第37页 |
4.2.2 LPS工作液的配置 | 第37页 |
4.2.3 造模方法 | 第37页 |
4.2.4 样本的采集 | 第37页 |
4.2.5 观察指标 | 第37-38页 |
4.2.6 检测指标 | 第38页 |
4.2.7 实时荧光相对定量PCR | 第38-39页 |
4.2.8 统计学方法 | 第39-40页 |
4.3 实验结果 | 第40-42页 |
4.3.1 一般情况观察 | 第40页 |
4.3.2 相对定量PCR法检测肠道主要菌群相对含量比较 | 第40-42页 |
4.4 讨论 | 第42-44页 |
第5章 岭南温病湿热证小鼠模型结肠TLR4、CD14转录水平检测及茵陈蒿汤在温病湿热证的清热机理探索 | 第44-56页 |
5.1 实验材料 | 第44-45页 |
5.1.1 动物 | 第44页 |
5.1.2 饲料 | 第44页 |
5.1.3 实验药物 | 第44页 |
5.1.4 实验试剂 | 第44页 |
5.1.5 实验仪器 | 第44-45页 |
5.1.6 实验药物配制 | 第45页 |
5.1.7 动物药物剂量的计算 | 第45页 |
5.1.8 DEPC水的配置 | 第45页 |
5.1.9 实验耗材Rnase-Free的处理 | 第45页 |
5.2 实验方法 | 第45-48页 |
5.2.1 动物分组 | 第45页 |
5.2.2 模型造模方法 | 第45页 |
5.2.3 实验步骤 | 第45页 |
5.2.4 取材组织的保存 | 第45-46页 |
5.2.5 RNA提取 | 第46页 |
5.2.6 基因组DNA去除 | 第46页 |
5.2.7 RNA逆转录 | 第46-47页 |
5.2.8 实时荧光相对定量PCR | 第47-48页 |
5.2.9 统计学方法 | 第48页 |
5.3 实验结果 | 第48-53页 |
5.3.1 一般情况观察 | 第48-49页 |
5.3.2 3种引物的熔解曲线 | 第49页 |
5.3.3 3种引物的扩增效率计算 | 第49-50页 |
5.3.4 目的基因相对定量结果 | 第50-52页 |
5.3.5 茵陈蒿汤对各组小鼠模型血清TNF-α含量变化 | 第52-53页 |
5.4 讨论 | 第53-56页 |
第6章 岭南温病湿热证小鼠模型结肠AQP3、AQP8转录水平检测及茵陈蒿汤对温病湿热证的利湿机理探索 | 第56-64页 |
6.1 实验材料 | 第56页 |
6.1.1 动物 | 第56页 |
6.1.2 饲料 | 第56页 |
6.1.3 实验药物 | 第56页 |
6.1.4 实验试剂 | 第56页 |
6.1.5 实验仪器 | 第56页 |
6.1.6 实验药物配制 | 第56页 |
6.1.7 动物药物剂量的计算 | 第56页 |
6.1.8 DEPC水的配置 | 第56页 |
6.1.9 实验耗材Rnase-Free的处理 | 第56页 |
6.2 实验方法 | 第56-58页 |
6.2.1 动物分组 | 第56页 |
6.2.2 模型造模方法 | 第56页 |
6.2.3 实验步骤 | 第56页 |
6.2.4 取材组织的保存 | 第56页 |
6.2.5 RNA提取 | 第56页 |
6.2.6 基因组DNA去除 | 第56-57页 |
6.2.7 RNA逆转录 | 第57页 |
6.2.8 实时荧光相对定量PCR | 第57页 |
6.2.9 统计学方法 | 第57-58页 |
6.3 实验结果 | 第58-61页 |
6.3.1 一般情况观察 | 第58页 |
6.3.2 3种引物的熔解曲线 | 第58页 |
6.3.3 3种引物的扩增效率计算 | 第58-59页 |
6.3.4 目的基因相对定量结果 | 第59-61页 |
6.4 讨论 | 第61-64页 |
结语 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-72页 |
附录 | 第72-75页 |
致谢 | 第75-76页 |
统计学审核证明 | 第76页 |