| 中文摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 1 氧化应激相关脑老化研究进展 | 第10-17页 |
| 1.1 脑老化概述 | 第10页 |
| 1.2 研究脑老化的重要性 | 第10-11页 |
| 1.3 氧化应激相关脑老化研究进展 | 第11-16页 |
| 1.3.1 钙稳态学说 | 第11页 |
| 1.3.2 自由基的代谢变化 | 第11-12页 |
| 1.3.3 线粒体损伤学说 | 第12-13页 |
| 1.3.4 氧化应激 | 第13-14页 |
| 1.3.5 炎症反应 | 第14页 |
| 1.3.6 micro RNA | 第14-16页 |
| 1.4 本论文切入点与实验设计思路 | 第16-17页 |
| 2 氧化应激相关的mi RNA研究 | 第17-29页 |
| 2.1 氧化应激与mi RNA关系 | 第17页 |
| 2.2 材料与方法 | 第17-23页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第17页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第17页 |
| 2.2.3 主要器材 | 第17页 |
| 2.2.4 实验试剂配制 | 第17-18页 |
| 2.2.5 实验方法 | 第18-23页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第23-29页 |
| 2.3.1 不同年龄组大鼠脑组织中与氧化应激相关的mi RNAs差异表达 | 第23-24页 |
| 2.3.2 差异表达的mi RNAs深度测序数据和q RT-PCR数据对比 | 第24-25页 |
| 2.3.3 差异表达的mi RNAs潜在的靶基因和调控通路预测 | 第25页 |
| 2.3.4 蛋白相互作用分析 | 第25-27页 |
| 2.3.5 讨论分析 | 第27-29页 |
| 3 脑老化过程中羰基化蛋白组学变化研究 | 第29-54页 |
| 3.1 蛋白羰基概述 | 第29-30页 |
| 3.2 Fr MDA、Pr MDA、LOOH和Pr OOH方法概述 | 第30页 |
| 3.3 材料与方法 | 第30页 |
| 3.3.1 实验材料 | 第30页 |
| 3.3.2 实验方法 | 第30页 |
| 3.4 氧化指标测定 | 第30-43页 |
| 3.4.1 实验试剂 | 第30-31页 |
| 3.4.2 主要仪器 | 第31-32页 |
| 3.4.3 MDA的测定（TBARS法） | 第32-33页 |
| 3.4.4 总抗氧化能力（T-AOC）测定 | 第33-35页 |
| 3.4.5 总巯基测定（GSH） | 第35-36页 |
| 3.4.6 Fr MDA、Pr MDA、LOOH和Pr OOH测定 | 第36-42页 |
| 3.4.7 考马斯亮蓝蛋白定量法 | 第42-43页 |
| 3.5 羰基蛋白提取与纯化 | 第43-47页 |
| 3.5.1 实验原理 | 第43-44页 |
| 3.5.2 实验试剂 | 第44-45页 |
| 3.5.3 主要仪器 | 第45页 |
| 3.5.4 试剂的配制 | 第45页 |
| 3.5.5 羰基蛋白提取与纯化实验步骤 | 第45-47页 |
| 3.6 ESI-Q-TOF-MS/MS分析 | 第47页 |
| 3.7 生物信息学数据分析 | 第47-48页 |
| 3.8 统计分析 | 第48页 |
| 3.9 结果与讨论 | 第48-54页 |
| 3.9.1 不同年龄组大鼠血清氧化应激水平变化 | 第48-49页 |
| 3.9.2 鉴定出不同年龄组脑组织中羰基化修饰敏感型蛋白 | 第49-50页 |
| 3.9.3 生物信息学及统计学分析 | 第50-52页 |
| 3.9.4 讨论 | 第52-54页 |
| 4 讨论与总结 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-64页 |
| 已发表的论文目录 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
