| 致谢 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| 英文摘要 | 第9-12页 |
| 缩写词表 | 第13-18页 |
| 第一部分 时空动态的PET影像活体监测诱导多功能干细胞、神经干细胞及中药清开灵治疗脑缺血损伤大鼠模型的研究 | 第18-61页 |
| 1. 前言 | 第22-28页 |
| 2. 实验方法 | 第28-45页 |
| 2.1 主要试剂及耗材 | 第28-29页 |
| 2.2 主要仪器及器械 | 第29-30页 |
| 2.3 实验动物及细胞 | 第30-31页 |
| 2.4 iPSCs培养 | 第31-33页 |
| 2.5 NSCs培养 | 第33-35页 |
| 2.6 大鼠脑缺血模型的建立 | 第35-36页 |
| 2.7 神经行为学评价 | 第36-37页 |
| 2.8 实验动物分组 | 第37-38页 |
| 2.9 iPSCs和NSCs侧脑室定位移植 | 第38-39页 |
| 2.10 小动物PET扫描及图像处理 | 第39-40页 |
| 2.11 放射自显影 | 第40-41页 |
| 2.12 免疫组织化学检测 | 第41-43页 |
| 2.13 数据分析 | 第43页 |
| 2.14 实验流程 | 第43-45页 |
| 3. 结果 | 第45-57页 |
| 3.1 饲养层细胞制备和干细胞培养 | 第45-46页 |
| 3.2 microPET评价 | 第46-48页 |
| 3.3 放射自显影 | 第48-49页 |
| 3.4 神经行为学评价 | 第49-50页 |
| 3.5 免疫组化检测 | 第50-53页 |
| 3.6 免疫荧光检测 | 第53-55页 |
| 3.7 相关性分析 | 第55-57页 |
| 4. 讨论 | 第57-60页 |
| 5. 结论 | 第60-61页 |
| 第二部分 双模式分子影像活体监测IPSCS移植治疗缺血性脑损伤的实验研究 | 第61-90页 |
| 1. 前言 | 第65-68页 |
| 2. 实验方法 | 第68-78页 |
| 2.1 主要试剂 | 第68页 |
| 2.2 主要仪器及耗材 | 第68-69页 |
| 2.3 实验动物及细胞 | 第69-70页 |
| 2.4 慢病毒质粒pKC-EFRT构建 | 第70-72页 |
| 2.5 293T胞培养 | 第72-73页 |
| 2.6 慢病毒的包装 | 第73-75页 |
| 2.7 iPSCs培养和感染病毒 | 第75-76页 |
| 2.8 体外和体内双模式显像 | 第76-77页 |
| 2.9 数据分析 | 第77-78页 |
| 3. 实验结果 | 第78-87页 |
| 3.1 质粒构建 | 第78-80页 |
| 3.2 293T细胞培养 | 第80页 |
| 3.3 慢病毒包装 | 第80-82页 |
| 3.4 iPSCs转染的鉴定及microPET成像 | 第82-85页 |
| 3.5 生物发光成像 | 第85-87页 |
| 4. 讨论 | 第87-89页 |
| 5. 结论 | 第89-90页 |
| 全文结论 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-100页 |
| 综述 | 第100-122页 |
| 参考文献 | 第113-122页 |
| 作者简介 | 第122-123页 |
