| 内容提要 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 英文缩写词表 | 第14-15页 |
| 第一章 前言 | 第15-17页 |
| 第二章 文献综述 | 第17-33页 |
| 1. 激活素A及其受体相关信号途径研究进展 | 第17-25页 |
| 2. 脑缺血预处理后神经保护机制的研究进展 | 第25-33页 |
| 第三章 PC12细胞转化为神经元样细胞的培养、鉴定 | 第33-41页 |
| 3.1 材料 | 第33-34页 |
| 3.2 方法 | 第34-36页 |
| 3.3 实验结果 | 第36-38页 |
| 3.3.1 PC12细胞传代培养及体外神经元样细胞转化、鉴定 | 第36-38页 |
| 3.4 讨论 | 第38-40页 |
| 3.5 小结 | 第40-41页 |
| 第四章 神经元样PC12细胞体外IS及IPC模型的制备 | 第41-51页 |
| 4.1 材料 | 第41-42页 |
| 4.2 方法 | 第42-44页 |
| 4.3 实验结果 | 第44-47页 |
| 4.3.1 氧糖剥夺不同时间培养液环境变化 | 第44-45页 |
| 4.3.2 氧糖剥夺不同时间MTT细胞活力检测 | 第45-47页 |
| 4.4 讨论 | 第47-49页 |
| 4.5 小结 | 第49-51页 |
| 第五章 IPC诱导神经元样细胞自身靶向缺血耐受作用研究 | 第51-61页 |
| 5.1 材料 | 第51-52页 |
| 5.2 方法 | 第52-53页 |
| 5.3 实验结果 | 第53-57页 |
| 5.3.1 IPC对神经元样PC12细胞IS损伤的影响 | 第53-55页 |
| 5.3.2 不同IPC延长期对神经元样PC12细胞IS损伤的影响 | 第55-57页 |
| 5.4 讨论 | 第57-59页 |
| 5.5 小结 | 第59-61页 |
| 第六章 ACTA信号参与IPC诱导神经元样细胞缺血耐受作用机制研究 | 第61-77页 |
| 6.1 材料 | 第61-62页 |
| 6.2 方法 | 第62-69页 |
| 6.3 实验结果 | 第69-72页 |
| 6.3.1 IPC后Act A， Act RIIA， Smad3基因表达检测 | 第69页 |
| 6.3.2 IPC/IS对神经元样细胞外分泌Act A蛋白的影响 | 第69-70页 |
| 6.3.3 IPC/IS对神经元样细胞ActRIIA蛋白表达的影响 | 第70-71页 |
| 6.3.4 IPC/IS对神经元样细胞细胞内磷酸化Smad3蛋白表达的影响 | 第71页 |
| 6.3.5 ActRIIA水平阻断ActA信号对IPC诱导缺血耐受作用的影响 | 第71-72页 |
| 6.4 讨论 | 第72-75页 |
| 6.5 小结 | 第75-77页 |
| 第七章 ACTA受体下游信号调控参与IPC诱导缺血耐受作用机制研究 | 第77-91页 |
| 7.1 材料 | 第77-78页 |
| 7.2 方法 | 第78-80页 |
| 7.3 实验结果 | 第80-86页 |
| 7.3.1 IPC对Act RIIA下游JNK1信号的影响 | 第80页 |
| 7.3.2 IS对Act RIIA下游JNK1信号的影响 | 第80-81页 |
| 7.3.3 抑制JNK1对Act RIIA下游Smads信号的影响 | 第81-83页 |
| 7.3.4 抑制JNK1对IS过程中Act RIIA下游Smads信号的影响 | 第83-84页 |
| 7.3.5 抑制JNK1对神经元样PC12细胞抗IS损伤能力的影响 | 第84-86页 |
| 7.4 讨论 | 第86-89页 |
| 7.5 小结 | 第89-91页 |
| 第八章 结论 | 第91-93页 |
| 创新点 | 第93-95页 |
| 参考文献 | 第95-109页 |
| 攻读博士期间获得的成果 | 第109-111页 |
| 致谢 | 第111页 |
