| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-27页 |
| 1.1 研究背景 | 第12-14页 |
| 1.1.1 水体富营养化的现状及危害 | 第12-13页 |
| 1.1.2 磷污染的控制及回收问题 | 第13-14页 |
| 1.2 污水生物除磷技术 | 第14-16页 |
| 1.2.1 传统生物除磷技术 | 第14页 |
| 1.2.2 新型生物除磷技术 | 第14-16页 |
| 1.3 磷化氢的研究状况 | 第16-20页 |
| 1.3.1 磷化氢的性质及分析方法 | 第16-17页 |
| 1.3.2 磷化氢的生物产生机制 | 第17-18页 |
| 1.3.3 磷化氢在污水处理中的研究现状及意义 | 第18-20页 |
| 1.4 脱氢酶和碱性磷酸酶在产磷化氢过程中的作用 | 第20-22页 |
| 1.4.1 脱氢酶的活性和作用 | 第20-21页 |
| 1.4.2 碱性磷酸酶的活性和作用 | 第21-22页 |
| 1.5 分子生物学分析技术与高通量测序技术 | 第22-24页 |
| 1.5.1 16S rDNA序列分析技术 | 第22页 |
| 1.5.2 高通量测序技术在厌氧微生物研究中的应用 | 第22-24页 |
| 1.6 课题研究意义及内容 | 第24-27页 |
| 1.6.1 课题的来源 | 第24-25页 |
| 1.6.2 课题研究目的及意义 | 第25页 |
| 1.6.3 课题研究的内容 | 第25-26页 |
| 1.6.4 课题的技术路线 | 第26-27页 |
| 第二章 试验材料与方法 | 第27-41页 |
| 2.1 接种泥源 | 第27页 |
| 2.2 人工培养液 | 第27页 |
| 2.3 试验装置和仪器 | 第27-29页 |
| 2.4 检测分析项目和方法 | 第29-41页 |
| 2.4.1 试验水质分析项目及方法 | 第29页 |
| 2.4.2 试验产气量及磷化氢检测方法 | 第29-33页 |
| 2.4.3 试验污泥酶活性测定方法 | 第33-36页 |
| 2.4.4 试验污泥粒度及形态检测方法 | 第36-37页 |
| 2.4.5 微生物菌群结构分析方法 | 第37-41页 |
| 第三章 1~ | 第41-48页 |
| 3.1 试验运行工况 | 第41页 |
| 3.2 1~ | 第41-43页 |
| 3.2.1 1~ | 第41-42页 |
| 3.2.2 2~ | 第42-43页 |
| 3.3 1~ | 第43-45页 |
| 3.3.1 1~ | 第43-44页 |
| 3.3.2 2~ | 第44-45页 |
| 3.4 1~ | 第45-47页 |
| 3.4.1 1~ | 第45-46页 |
| 3.4.2 2~ | 第46-47页 |
| 3.5 本章小结 | 第47-48页 |
| 第四章 1~ | 第48-57页 |
| 4.1 1~ | 第48-51页 |
| 4.1.1 1~ | 第48-50页 |
| 4.1.2 2~ | 第50-51页 |
| 4.2 1~ | 第51-54页 |
| 4.2.1 1~ | 第52-53页 |
| 4.2.2 2~ | 第53-54页 |
| 4.3 MBP与酶活性的关系 | 第54-55页 |
| 4.4 本章小结 | 第55-57页 |
| 第五章 1~ | 第57-78页 |
| 5.1 厌氧污泥样品选择与数据预处理 | 第57-60页 |
| 5.1.1 厌氧污泥样品的选择 | 第57-58页 |
| 5.1.2 测序数据处理结果 | 第58-60页 |
| 5.2 DNA浓度检测和PCR扩增结果 | 第60-61页 |
| 5.2.1 DNA浓度检测结果 | 第60-61页 |
| 5.2.2 PCR扩增结果 | 第61页 |
| 5.3 厌氧产磷化氢系统菌群结构比较 | 第61-76页 |
| 5.3.1 菌群多样性 | 第61-63页 |
| 5.3.2 菌群相似性 | 第63-65页 |
| 5.3.3 1~ | 第65-67页 |
| 5.3.4 主导菌群的相对丰度 | 第67-74页 |
| 5.3.5 物种相对丰度热图 | 第74-76页 |
| 5.4 本章小结 | 第76-78页 |
| 第六章 结论与展望 | 第78-80页 |
| 6.1 结论 | 第78-79页 |
| 6.2 展望 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-85页 |
| 附录A 攻读硕士期间发表的论文情况 | 第85-86页 |
| 附录B 各污泥样品细菌种群的相似值 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87页 |