| 摘要 | 第9-12页 |
| 第一部分 文献综述 | 第12-31页 |
| 第一章 SNARE蛋白在生物体内的分布及作用 | 第13-23页 |
| 1 SNARE蛋白在动物体内的分布与作用 | 第13-20页 |
| 1.1 Syntaxin | 第13-15页 |
| 1.2 VAMP | 第15页 |
| 1.3 SNAP25 | 第15-16页 |
| 1.4 SNARE蛋白之间的相互作用 | 第16-17页 |
| 1.5 SNARE相关蛋白 | 第17-19页 |
| 1.6 SNARE在树突细胞中的作用 | 第19页 |
| 1.7 SNARE在肿瘤发生中的作用 | 第19-20页 |
| 2 SNARE在植物体内的分布与作用 | 第20-21页 |
| 3 SNARE在微生物体内的分布与作用 | 第21-23页 |
| 第二章 SNARE蛋白在动物毛色形成中的作用 | 第23-30页 |
| 1 毛囊是毛色形成的组织学基础 | 第23页 |
| 1.1 被毛与皮肤的组织学关系 | 第23页 |
| 1.2 毛囊组织学结构 | 第23页 |
| 2 毛囊色素单位是毛色形成的机能单位 | 第23-24页 |
| 2.1 黑素细胞的生物学特性 | 第24页 |
| 2.2 角化细胞的生物学特性 | 第24页 |
| 3 毛囊色素单位中黑色素转移机制 | 第24-25页 |
| 4 毛囊色素单位中黑色素转移的调节 | 第25-27页 |
| 4.1 紫外辐照对毛囊色素单位的调控 | 第25-26页 |
| 4.2 角化细胞因子调节黑素体转移 | 第26页 |
| 4.3 Melanoregulin调节黑素小体从黑素细胞向角化细胞转移 | 第26-27页 |
| 4.4 Rab11b介导黑色素由黑素细胞向角化细胞转移 | 第27页 |
| 5 SNARE蛋白在黑素细胞中的分布和作用 | 第27-30页 |
| 5.1 Syntaxin3 | 第27-28页 |
| 5.2 Syntaxin4 | 第28页 |
| 5.3 Syntaxin7 | 第28页 |
| 5.4 Syntaxin13 | 第28-29页 |
| 5.5 VAMP7 | 第29页 |
| 5.6 SNARE相关蛋白 | 第29-30页 |
| 第三章 研究目的、意义与内容 | 第30-31页 |
| 第二部分 试验部分 | 第31-87页 |
| 第一章 SNARE蛋白参与毛色形成的生物信息学分析 | 第31-44页 |
| 1 材料与方法 | 第32-33页 |
| 1.1 SNARE家族成员序列信息 | 第32页 |
| 1.2 SNARE家族成员结构预测 | 第32页 |
| 1.3 SNARE家族成员跨膜区域的预测分析 | 第32页 |
| 1.4 Stx4和Stx17各条基因不同物种间的一致性分析 | 第32页 |
| 1.5 启动子分析 | 第32-33页 |
| 2 结果 | 第33-43页 |
| 2.1 SNARE家族成员三级结构预测 | 第33-34页 |
| 2.2 SNARE家族成员跨膜区域的分析 | 第34-36页 |
| 2.3 SNAREs和相关蛋白的结构域分析 | 第36-38页 |
| 2.4 序列同源性分析 | 第38-39页 |
| 2.5 启动子分析 | 第39-43页 |
| 3 讨论 | 第43-44页 |
| 第二章 SNARE蛋白在小鼠背腹皮肤的差异表达 | 第44-52页 |
| 1 材料和方法 | 第45-47页 |
| 1.1 样品采集 | 第45页 |
| 1.2 黑色素含量的分光光度测定 | 第45页 |
| 1.3 总RNA的提取 | 第45页 |
| 1.4 实时荧光定量PCR分析 | 第45-47页 |
| 1.5 统计分析 | 第47页 |
| 1.6 18个所选蛋白质相互作用的预测 | 第47页 |
| 2 结果 | 第47-50页 |
| 3 讨论 | 第50-52页 |
| 第三章 Stx4在小鼠毛色形成中作用的研究 | 第52-63页 |
| 1 材料与方法 | 第53-55页 |
| 1.1 主要试剂和仪器 | 第53页 |
| 1.2 白灰黑三种毛色皮肤样本及细胞样本采集 | 第53页 |
| 1.3 总RNA的提取及cDNA合成 | 第53-54页 |
| 1.4 引物设计及PCR反应 | 第54页 |
| 1.5 实时荧光定量PCR(Real-Time PCR)检测 | 第54页 |
| 1.6 Western blot分析 | 第54-55页 |
| 1.7 小鼠黑色素细胞复苏、培养与检测 | 第55页 |
| 1.8 免疫化学分析 | 第55页 |
| 2 结果 | 第55-62页 |
| 2.1 小鼠皮肤中Stx4的表达与定位 | 第55-60页 |
| 2.2 在小鼠黑色素细胞中Stx4的表达与定位 | 第60-62页 |
| 3 讨论 | 第62-63页 |
| 第四章 Stx4在绵羊毛色形成中作用的研究 | 第63-73页 |
| 1 材料与方法 | 第64-65页 |
| 1.1 主要试剂和仪器 | 第64页 |
| 1.2 实验动物及两种毛色皮肤样本的采集 | 第64页 |
| 1.3 总RNA的提取及cDNA合成 | 第64页 |
| 1.4 引物设计及PCR反应 | 第64页 |
| 1.5 实时荧光定量PCR(Real-Time PCR)检测 | 第64页 |
| 1.6 Western blot分析 | 第64页 |
| 1.7 绵羊黑色素细胞复苏、培养与检测 | 第64页 |
| 1.8 免疫组化分析 | 第64-65页 |
| 2 结果 | 第65-70页 |
| 2.1 绵羊皮肤组织与体外培养黑素细胞中Stx4的PCR扩增 | 第65-66页 |
| 2.2 绵羊皮肤组织中STX4表达的Western blot结果 | 第66-67页 |
| 2.3 绵羊与小鼠皮肤组织结构 | 第67-68页 |
| 2.4 绵羊皮肤组织STX4的免疫组化结果 | 第68-69页 |
| 2.5 绵羊黑素细胞STX4的免疫组化结果 | 第69-70页 |
| 2.6 绵羊黑素细胞STX4的Western blot结果 | 第70页 |
| 3 讨论 | 第70-73页 |
| 第五章 Stx17在绵羊毛色形成中作用的研究 | 第73-79页 |
| 1 材料与方法 | 第73页 |
| 2 结果 | 第73-76页 |
| 2.1 体外培养绵羊黑素细胞Stx17的PCR扩增 | 第73-74页 |
| 2.2 绵羊皮肤组织STX17表达的Western blot结果 | 第74-75页 |
| 2.3 绵羊皮肤组织STX17的免疫组化结果 | 第75页 |
| 2.4 绵羊黑素细胞STX17的免疫组化结果 | 第75-76页 |
| 2.5 绵羊黑素细胞STX17的Western blot结果 | 第76页 |
| 3 讨论 | 第76-79页 |
| 第六章 羊驼Stx4和Stx17相关信息的分析与检测 | 第79-87页 |
| 1 材料与方法 | 第79-80页 |
| 2 结果 | 第80-84页 |
| 2.1 人类与羊驼STX4和STX17的结构预测与跨膜结构域分析 | 第80-82页 |
| 2.2 羊驼皮肤STX4和STX17免疫组化结果 | 第82-83页 |
| 2.3 羊驼黑素细胞的体外培养 | 第83-84页 |
| 2.4 羊驼STX4和STX17在黑素细胞中表达的Western blot检测 | 第84页 |
| 3 讨论 | 第84-87页 |
| 全文总结 | 第87-89页 |
| 研究创新与展望 | 第89-90页 |
| 中英文对照及缩写表 | 第90-91页 |
| 参考文献 | 第91-101页 |
| Abstract | 第101-104页 |
| 致谢 | 第105页 |
