| 中文摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 第一章 前言 | 第9-17页 |
| 1. 食用菌研究背景 | 第9-12页 |
| ·真菌多糖活性研究 | 第9-11页 |
| ·金福菇研究进展 | 第11-12页 |
| 2. 衰老相关背景 | 第12-15页 |
| ·细胞周期 | 第12-13页 |
| ·细胞衰老调控通路 | 第13页 |
| ·衰老动物模型的建立 | 第13-15页 |
| 3. 主要研究目的与内容 | 第15-17页 |
| 第二章 金福菇多糖TLH-3对过氧化损伤细胞的保护作用 | 第17-25页 |
| 1. 材料与仪器 | 第17页 |
| ·实验材料 | 第17页 |
| ·实验仪器 | 第17页 |
| 2. 实验方法 | 第17-19页 |
| ·原料与试剂准备 | 第17-18页 |
| ·细胞培养与诱导 | 第18页 |
| ·MTT检测 | 第18页 |
| ·Hoechst 33342/PI双染检测 | 第18-19页 |
| ·Annexin V-FITC/PI流式细胞术 | 第19页 |
| ·统计分析 | 第19页 |
| 3. 结果与分析 | 第19-23页 |
| ·MTT法检测t-BHP对HELF细胞的毒性 | 第19-20页 |
| ·TLH-3对t-BHP作用下的HELF细胞的保护作用 | 第20-21页 |
| ·Hoechst 33342/PI双染法观察TLH-3对t-BHP诱导的HELF细胞凋亡的保护作用 | 第21-22页 |
| ·Annexin V-FITC/PI流式细胞术检测TLH-3对t-BHP诱导的HELF细胞凋亡的保护作用 | 第22-23页 |
| 4. 结论 | 第23-25页 |
| 第三章 金福菇多糖TLH-3对t-BHP诱导的衰老细胞HELF的作用 | 第25-32页 |
| 1. 材料与仪器 | 第25页 |
| ·实验材料 | 第25页 |
| ·实验仪器 | 第25页 |
| 2. 实验方法 | 第25-28页 |
| ·原料及试剂准备 | 第25-26页 |
| ·细胞培养与建模 | 第26页 |
| ·细胞周期检测 | 第26页 |
| ·Western Blot检测p21蛋白表达 | 第26-27页 |
| ·统计分析 | 第27-28页 |
| 3. 结果与分析 | 第28-31页 |
| ·流式细胞术检测不同浓度TLH-3作用下的细胞周期 | 第28-31页 |
| ·Western Blot检测TLH-3对细胞p21蛋白表达的影响 | 第31页 |
| 4. 结论 | 第31-32页 |
| 第四章 金福菇多糖对D-半乳糖诱导的衰老模型小鼠的作用 | 第32-41页 |
| 1. 材料与仪器 | 第32页 |
| ·实验材料 | 第32页 |
| ·实验仪器 | 第32页 |
| 2. 实验方法 | 第32-37页 |
| ·原料与试剂准备 | 第32-33页 |
| ·实验小鼠分组、建模及给药方案 | 第33页 |
| ·小鼠皮肤羟脯氨酸含量变化 | 第33-34页 |
| ·小鼠血清、心脏的SOD、MDA检测 | 第34-35页 |
| ·光镜观察TLH对致衰老模型小鼠肾组织的病理学变化 | 第35-36页 |
| ·免疫组化法检测TLH对小鼠肾组织p21的表达的影响 | 第36-37页 |
| ·统计分析 | 第37页 |
| 3. 结果与分析 | 第37-40页 |
| ·小鼠皮肤羟脯氨酸含量变化 | 第37页 |
| ·小鼠血清、心脏的SOD、MDA检测 | 第37-38页 |
| ·光镜观察TLH-3对衰老模型小鼠肾脏的病理学变化 | 第38-39页 |
| ·免疫组化法检测TLH-3对小鼠肾组织p21的表达的影响 | 第39-40页 |
| 4. 结论 | 第40-41页 |
| 全文小结 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第48页 |
