| 中文摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 目录 | 第7-9页 |
| 符号说明 | 第9-10页 |
| 第一部分 文献综述 | 第10-21页 |
| 1 VEGF家族 | 第10-12页 |
| ·VEGF-A | 第10-11页 |
| ·VEGF-B | 第11页 |
| ·VEGF-C | 第11-12页 |
| ·VEGF-D | 第12页 |
| ·胎盘生长因子 | 第12页 |
| 2 VEGF蛋白结构 | 第12页 |
| 3 VEGF受体及生物学功能 | 第12-15页 |
| ·VEGFR-1 | 第14页 |
| ·VEGFR-2 | 第14-15页 |
| ·VEGFR3 | 第15页 |
| 4 VEGF的功能 | 第15-16页 |
| ·VEGF增加血管通透性 | 第15页 |
| ·VEGF促进血管内皮细胞增殖、血管生成 | 第15-16页 |
| ·VEGF在组织愈伤中的作用 | 第16页 |
| 5 VEGF/VEGFR在血管生成中的调节机制 | 第16-19页 |
| ·PI3K/AKT信号通路 | 第17-18页 |
| ·Ras/MEK/MAPK信号通路 | 第18页 |
| ·PLC/PKC信号通路 | 第18-19页 |
| ·VEGF/VEGFR-eNOS信号通路 | 第19页 |
| 6 VEGF极其受体为靶点的发展前景 | 第19-21页 |
| 第二部分 实验内容 | 第21-46页 |
| 第一章 基质胶塞模型中洛克沙肿对血管生成的影响 | 第21-28页 |
| 1 材料 | 第21-22页 |
| ·药品及试剂 | 第21页 |
| ·仪器及器械 | 第21-22页 |
| ·溶液配制 | 第22页 |
| ·实验动物 | 第22页 |
| 2 方法 | 第22-23页 |
| ·内皮细胞的培养 | 第22-23页 |
| ·小鼠基质胶塞试验 | 第23页 |
| ·统计学方法 | 第23页 |
| 3 结果 | 第23-26页 |
| ·胶塞形成 | 第23-25页 |
| ·胶塞中血红蛋白含量 | 第25-26页 |
| 4 讨论 | 第26-27页 |
| 5 小结 | 第27-28页 |
| 第二章 洛克沙胂对内皮细胞增殖的影响 | 第28-37页 |
| 1 材料 | 第28-29页 |
| ·实验药物 | 第28页 |
| ·试剂 | 第28页 |
| ·仪器 | 第28-29页 |
| ·试剂配制 | 第29页 |
| 2 方法 | 第29-30页 |
| ·内皮细胞培养 | 第29页 |
| ·管形成实验 | 第29页 |
| ·MTT实验 | 第29-30页 |
| ·统计学分析 | 第30页 |
| 3 结果 | 第30-34页 |
| ·管形成的结果分析 | 第30-32页 |
| ·MTT法检测不同处理对内皮细胞活力的影响 | 第32-34页 |
| 4 讨论 | 第34-36页 |
| 5 小结 | 第36-37页 |
| 第三章 洛克沙胂促内皮细胞生长中VEGF的表达 | 第37-46页 |
| 1 材料 | 第37-39页 |
| ·药品 | 第37页 |
| ·主要试剂 | 第37-38页 |
| ·主要仪器 | 第38页 |
| ·试剂溶液及配置 | 第38-39页 |
| 2 方法 | 第39-41页 |
| ·内皮细胞培养 | 第39页 |
| ·ELISA检测培养液中的VEGF表达 | 第39页 |
| ·Western Blot检测内皮细胞中的VEGF表达 | 第39-41页 |
| ·统计学分析 | 第41页 |
| 3 结果 | 第41-44页 |
| ·培养液中的VEGF的表达 | 第41-42页 |
| ·Western Blot检测内皮细胞中的VEGF表达的结果分析 | 第42-44页 |
| 4 讨论 | 第44-45页 |
| 5 小结 | 第45-46页 |
| 全文结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第55-56页 |