| 摘要 | 第1-10页 |
| 引言 | 第10-11页 |
| 文献综述 | 第11-17页 |
| 1 MD的研究现状 | 第11-14页 |
| ·病原体 | 第11页 |
| ·MDV的基本生物学特性 | 第11页 |
| ·MDV的致瘤基因 | 第11页 |
| ·临床症状与病理变化 | 第11-12页 |
| ·MD病变形成过程 | 第12-13页 |
| ·预防和控制 | 第13-14页 |
| ·MD疫苗 | 第13页 |
| ·其他措施 | 第13-14页 |
| 2 血管内皮细胞及其活性因子 | 第14-15页 |
| ·血管内皮细胞 | 第14页 |
| ·血管内皮细胞相关活性因子 | 第14-15页 |
| ·血管内皮细胞生长因子 | 第14页 |
| ·碱性成纤维细胞生长因子 | 第14-15页 |
| ·其他相关因子 | 第15页 |
| 3 肿瘤与血管新生 | 第15-16页 |
| 4 肿瘤的防治 | 第16页 |
| 5 血管内皮细胞相关活性因子与MD肿瘤 | 第16-17页 |
| 试验一 MD模型构建及相关血管活性因子基因克隆与序列分析 | 第17-24页 |
| 1 材料与方法 | 第17-20页 |
| ·试验材料 | 第17页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第17页 |
| ·试验方法 | 第17-20页 |
| ·动物分组 | 第17-18页 |
| ·MD模型建立 | 第18页 |
| ·PCR引物设计及合成 | 第18页 |
| ·RNA的提取及检测 | 第18-19页 |
| ·反转录反应及目标片段扩增 | 第19页 |
| ·RT-PCR产物的纯化 | 第19-20页 |
| ·PCR产物序列的测定 | 第20页 |
| 2 结果与分析 | 第20-22页 |
| ·MD模型病变 | 第20页 |
| ·总RNA的提取与检测 | 第20-21页 |
| ·PCR产物电泳 | 第21页 |
| ·PCR产物测序 | 第21-22页 |
| 3 讨论 | 第22-23页 |
| ·MD模型的评价 | 第22页 |
| ·VEGF、VEGFR2、bFGF基因部分cDNA序列的克隆及序列分析 | 第22-23页 |
| 4 小结 | 第23-24页 |
| 试验二 相关血管生成因子基因在MD肿瘤中的表达分析 | 第24-31页 |
| 1 材料与方法 | 第24-25页 |
| ·试验材料 | 第24页 |
| ·主要仪器与试剂 | 第24页 |
| ·试验方法 | 第24-25页 |
| ·动物分组 | 第24页 |
| ·MD模型建立 | 第24页 |
| ·引物设计 | 第24页 |
| ·标准曲线的制作 | 第24页 |
| ·QRT-PCR | 第24-25页 |
| ·试验数据的分析与统计 | 第25页 |
| 2 结果与分析 | 第25-28页 |
| ·标准曲线建立 | 第25-26页 |
| ·QRT-PCR结果 | 第26-28页 |
| 3 讨论 | 第28-30页 |
| ·实时荧光定量PCR的优化 | 第28-29页 |
| ·VEGF、VEGFR2及bFGF mRNA在MD肿瘤中的表达差异分析 | 第29-30页 |
| 4 小结 | 第30-31页 |
| 试验三 VEGF蛋白在MD肿瘤中的表达研究 | 第31-38页 |
| 1 材料与方法 | 第31-34页 |
| ·试验材料 | 第31页 |
| ·主要仪器与试剂 | 第31-32页 |
| ·试验方法 | 第32-34页 |
| ·动物分组 | 第32页 |
| ·模型构建 | 第32页 |
| ·总蛋白的提取及检测 | 第32页 |
| ·SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第32-33页 |
| ·转膜 | 第33页 |
| ·封闭与杂交 | 第33-34页 |
| ·显色 | 第34页 |
| ·Western blot图像分析 | 第34页 |
| 2 结果与分析 | 第34-35页 |
| 3 讨论 | 第35-37页 |
| ·Western Blot优化 | 第35-36页 |
| ·VEGF蛋白在MD肿瘤中的表达差异分析 | 第36-37页 |
| 4 小结 | 第37-38页 |
| 全文结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-44页 |
| Abstract | 第44-46页 |
| 中英文对照及缩写表 | 第46-48页 |
| 附录 在读期间发表如实验性论文的情况 | 第48-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
