| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-16页 |
| 缩略词 | 第16-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-39页 |
| ·引言 | 第18页 |
| ·ε-聚赖氨酸概述 | 第18-25页 |
| ·ε-聚赖氨酸分子结构 | 第18-19页 |
| ·ε-聚赖氨酸理化性质 | 第19页 |
| ·ε-聚赖氨酸分子构型 | 第19页 |
| ·ε-聚赖氨酸的抑菌谱 | 第19-20页 |
| ·ε-聚赖氨酸抑菌机制 | 第20-21页 |
| ·ε-聚赖氨酸工业生产 | 第21页 |
| ·ε-聚赖氨酸分离纯化 | 第21页 |
| ·ε-聚赖氨酸的安全性 | 第21-22页 |
| ·ε-聚赖氨酸各种应用 | 第22-25页 |
| ·菌株多样性 | 第25-26页 |
| ·生物合成研究 | 第26-30页 |
| ·生物合成途径 | 第26-27页 |
| ·硫及一些金属离子与ε-聚赖氨酸生物合成 | 第27-28页 |
| ·合成酶及反应特性 | 第28-29页 |
| ·合成酶基因 | 第29页 |
| ·ε-聚赖氨酸降解酶 | 第29-30页 |
| ·降解酶与生物合成 | 第30页 |
| ·筛选方法研究 | 第30-31页 |
| ·诱变育种研究 | 第31页 |
| ·定量分析研究 | 第31-32页 |
| ·生物过程研究 | 第32-36页 |
| ·培养基优化 | 第32-33页 |
| ·固定化细胞发酵 | 第33-34页 |
| ·葡萄糖/甘油共底物发酵 | 第34页 |
| ·两阶段pH控制发酵 | 第34页 |
| ·控制分子量发酵 | 第34-35页 |
| ·合成期pH优化 | 第35页 |
| ·气升式发酵 | 第35页 |
| ·过程参数优化 | 第35-36页 |
| ·研究意义、目的、内容及技术路线 | 第36-39页 |
| ·研究意义 | 第36页 |
| ·研究目的 | 第36页 |
| ·研究内容 | 第36-38页 |
| ·技术路线 | 第38-39页 |
| 第二章 菌株合成产物确证及分子量测定 | 第39-50页 |
| ·引言 | 第39-40页 |
| ·材料与方法 | 第40-43页 |
| ·菌株 | 第40页 |
| ·培养基 | 第40页 |
| ·主要化学试剂 | 第40页 |
| ·Tricine-SDS-PFGE电泳配剂 | 第40-41页 |
| ·主要仪器 | 第41页 |
| ·方法 | 第41-43页 |
| ·结果与讨论 | 第43-48页 |
| ·紫外光谱 | 第43-44页 |
| ·红外光谱 | 第44页 |
| ·核磁共振波谱 | 第44-47页 |
| ·Tricine-SDS-PAGE | 第47-48页 |
| ·MALDI-TOF-MS | 第48页 |
| ·本章小结 | 第48-50页 |
| 第三章 ε-聚赖氨酸对产生菌细胞效应研究 | 第50-62页 |
| ·引言 | 第50页 |
| ·材料与方法 | 第50-55页 |
| ·菌种 | 第50-51页 |
| ·培养基 | 第51页 |
| ·试剂及仪器 | 第51-52页 |
| ·方法 | 第52-55页 |
| ·结果与讨论 | 第55-61页 |
| ·pH对ε-聚赖氨酸吸附产生菌细胞的影响 | 第55-56页 |
| ·ε-聚赖氨酸吸附细胞的荧光显微镜观察 | 第56-57页 |
| ·钾离子泄漏 | 第57页 |
| ·ATP泄漏 | 第57-58页 |
| ·透射电子显微镜观察 | 第58-59页 |
| ·ε-聚赖氨酸对细胞代谢活性的影响 | 第59-61页 |
| ·本章小结 | 第61-62页 |
| 第四章 ε-聚赖氨酸生物过程细胞活性研究 | 第62-75页 |
| ·引言 | 第62-63页 |
| ·材料与方法 | 第63-67页 |
| ·菌种 | 第63页 |
| ·培养基 | 第63页 |
| ·试剂及仪器 | 第63-64页 |
| ·方法 | 第64-67页 |
| ·结果与讨论 | 第67-74页 |
| ·最优CTC染色时间 | 第67-68页 |
| ·生物过程不同时期细胞BacLight Live/Dead染色的LSCM分析 | 第68页 |
| ·生物过程不同时期细胞CTC染色的LSCM分析 | 第68-69页 |
| ·生物过程参数 | 第69-72页 |
| ·生物过程细胞活性变化的比色分析 | 第72-74页 |
| ·本章小结 | 第74-75页 |
| 第五章 赖氨酸对ε-聚赖氨酸生物合成影响研究 | 第75-88页 |
| ·引言 | 第75-76页 |
| ·材料与方法 | 第76-79页 |
| ·菌种 | 第76页 |
| ·培养基 | 第76页 |
| ·主要试剂及材料 | 第76页 |
| ·主要仪器 | 第76-77页 |
| ·方法 | 第77-79页 |
| ·结果与讨论 | 第79-85页 |
| ·L-赖氨酸对ε-聚赖氨酸生物合成的影响 | 第79-80页 |
| ·L-赖氨酸和D-赖氨酸对ε-聚赖氨酸生物合成影响比较 | 第80-82页 |
| ·L-赖氨酸和D-赖氨酸利用比较 | 第82-83页 |
| ·薄层层析 | 第83-84页 |
| ·LC-MS分析 | 第84-85页 |
| ·本章小结 | 第85-88页 |
| 第六章 ε-聚赖氨酸原位分离发酵研究 | 第88-98页 |
| ·引言 | 第88-89页 |
| ·材料与方法 | 第89-92页 |
| ·菌种 | 第89页 |
| ·培养基 | 第89页 |
| ·主要试剂 | 第89页 |
| ·主要仪器 | 第89-90页 |
| ·方法 | 第90-92页 |
| ·结果与讨论 | 第92-96页 |
| ·树脂吸附量及解析率 | 第92-93页 |
| ·反馈抑制效应 | 第93-94页 |
| ·摇瓶原位分离发酵 | 第94-95页 |
| ·原位分离补料分批发酵 | 第95-96页 |
| ·本章小结 | 第96-98页 |
| 第七章 ε-聚赖氨酸的固定化细胞原位分离发酵研究 | 第98-106页 |
| ·引言 | 第98页 |
| ·材料与方法 | 第98-101页 |
| ·菌种 | 第98页 |
| ·培养基 | 第98-99页 |
| ·主要试剂 | 第99页 |
| ·主要仪器 | 第99页 |
| ·固定材料 | 第99页 |
| ·方法 | 第99-101页 |
| ·结果与讨论 | 第101-104页 |
| ·固定材料筛选 | 第101-102页 |
| ·固定化细胞原位分离发酵 | 第102-103页 |
| ·固定化细胞可重复利用性能 | 第103-104页 |
| ·本章小结 | 第104-106页 |
| 第八章 调控细胞代谢活性的补料分批发酵研究 | 第106-117页 |
| ·引言 | 第106-107页 |
| ·材料与方法 | 第107-110页 |
| ·菌种 | 第107页 |
| ·培养基 | 第107页 |
| ·主要试剂 | 第107页 |
| ·主要仪器 | 第107-108页 |
| ·方法 | 第108-110页 |
| ·结果与讨论 | 第110-115页 |
| ·不同添加物对细胞生长、葡萄糖利用及ε-聚赖氨酸生物合成的影响 | 第110-111页 |
| ·酵母抽提物对细胞代谢活性的影响 | 第111-112页 |
| ·酵母抽提物对ε-聚赖氨酸/细胞干重比的影响 | 第112-113页 |
| ·调控活性的补料分批发酵 | 第113-114页 |
| ·两阶段pH控制补料分批发酵 | 第114-115页 |
| ·本章小结 | 第115-117页 |
| 结论与展望 | 第117-120页 |
| 结论 | 第117-118页 |
| 创新之处 | 第118-119页 |
| 展望 | 第119-120页 |
| 参考文献 | 第120-135页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第135-136页 |
| 致谢 | 第136-137页 |
| 附件 | 第137页 |
