摘要 | 第1-4页 |
Abstract | 第4-11页 |
1 引言 | 第11-20页 |
·钙及其受体蛋白概述 | 第11-12页 |
·Ca~(2+)受体蛋白 | 第11-12页 |
·CaM | 第12页 |
·CBPs概述 | 第12-19页 |
·CBPs与CaM的结合特性 | 第12-13页 |
·CBPs的分布 | 第13页 |
·植物CBPs的分类 | 第13-14页 |
·植物CBPs的分离鉴定 | 第14-15页 |
·植物CBPs参与的生物学反应 | 第15-18页 |
·CBP60s | 第18-19页 |
·研究目的和意义 | 第19-20页 |
2 实验材料和方法 | 第20-42页 |
·实验材料 | 第20-23页 |
·植物材料 | 第20页 |
·菌株和质粒 | 第20页 |
·主要实验试剂 | 第20-22页 |
·主要仪器 | 第22-23页 |
·方法 | 第23-42页 |
·拟南芥培养 | 第23页 |
·Pseudomonas syringae培养、植物侵染及细菌生长量检测 | 第23-24页 |
·拟南芥基因组DNA的提取 | 第24页 |
·拟南芥总RNA提取 | 第24-25页 |
·反转录(cDNA第一链的合成) | 第25-26页 |
·实时荧光定量PCR | 第26页 |
·Northern blotting检测 | 第26-30页 |
·CBP60g过表达载体构建 | 第30-34页 |
·CBP60g::GUS融合表达载体的构建 | 第34-36页 |
·利用Gateway技术构建35S::GFP-CBP60g表达载体 | 第36-38页 |
·植物遗传转化及转基因植株的获得 | 第38-40页 |
·GUS染色 | 第40页 |
·激光共聚焦扫描显微镜观察GFP | 第40页 |
·ABA、SA和非生物胁迫处理 | 第40-42页 |
·SA提取 | 第42页 |
3 拟南芥钙调素结合蛋白CBP60g对丁香假单胞菌的响应 | 第42-55页 |
·植物免疫反应系统 | 第42-46页 |
·SA | 第43-45页 |
·拟南芥与丁香假单胞菌互作 | 第45-46页 |
·结果与分析 | 第46-53页 |
·CBP60g基因的表达受丁香假单胞菌强烈诱导 | 第46-48页 |
·过表达CBP60g促进SA积累、PR基因表达和抗病性提高 | 第48-53页 |
·讨论 | 第53-55页 |
4 CBP60g的表达模式 | 第55-63页 |
·报告基因和Gateway克隆技术介绍 | 第55-58页 |
·GUS报告基因融合系统 | 第55页 |
·GFP报告基因 | 第55-56页 |
·Gateway技术 | 第56-58页 |
·结果与分析 | 第58-60页 |
·CBP60g组织特异性表达 | 第58-59页 |
·CBP60g亚细胞定位 | 第59-60页 |
·讨论 | 第60-63页 |
·CBP60g组织特异性表达 | 第60-61页 |
·CBP60g蛋白定位于细胞核 | 第61-63页 |
5 CBP60g对ABA和非生物胁迫的响应 | 第63-72页 |
·ABA简介 | 第63-65页 |
·ABA合成 | 第63页 |
·ABA的受体 | 第63-64页 |
·ABA的生理功能 | 第64-65页 |
·结果与分析 | 第65-71页 |
·CBP60g基因的表达受ABA和非生物胁迫诱导 | 第65-66页 |
·过表达CBP60g增强了拟南芥对ABA的敏感性 | 第66-68页 |
·CBP60g提高了拟南芥对干旱的耐受能力 | 第68-70页 |
·CBP60g影响拟南芥对CaCl_2的耐受能力 | 第70-71页 |
·讨论 | 第71-72页 |
·CBP60g正调节拟南芥对ABA的响应 | 第71页 |
·CBP60g是拟南芥对干旱耐受响应的正调节因子 | 第71-72页 |
·过表达CBP60g增强了拟南芥对CaCl_2的敏感性 | 第72页 |
6 CBP60g介导的SA和ABA信号相互作用途径 | 第72-81页 |
·植物激素互作简介 | 第72-73页 |
·结果与分析 | 第73-78页 |
·CBP60g过表达增强了ABA和非生物胁迫诱导的ICS1和EDS5基因的表达 | 第73-76页 |
·CBP60g介导的SA和ABA互作 | 第76-78页 |
·讨论 | 第78-81页 |
7 结论 | 第81-82页 |
致谢 | 第82-83页 |
参考文献 | 第83-96页 |
作者简介 | 第96页 |