| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 缩略词表 | 第8-12页 |
| 1. 绪论 | 第12-31页 |
| ·猕猴桃的栽培与地理分布 | 第12-13页 |
| ·猕猴桃的采后贮藏特性 | 第13-15页 |
| ·呼吸生理 | 第13页 |
| ·乙烯代谢 | 第13-14页 |
| ·内源激素变化 | 第14页 |
| ·酶生理 | 第14-15页 |
| ·乙烯与猕猴桃果实贮藏的关系 | 第15-24页 |
| ·腺苷蛋氨酸合成酶(SAMS) | 第17-18页 |
| ·ACC合成酶(ACS) | 第18-19页 |
| ·ACC氧化酶 | 第19-21页 |
| ·乙烯合成的基因工程调控 | 第21-22页 |
| ·ACC氧化酶基因的反义RNA调控 | 第22-24页 |
| ·猕猴桃组织培养技术 | 第24-26页 |
| ·培养基 | 第25-26页 |
| ·培养条件 | 第26页 |
| ·猕猴桃遗传转化研究进展 | 第26-28页 |
| ·研究目标和主要研究内容 | 第28-30页 |
| ·研究目标 | 第28-29页 |
| ·主要研究内容 | 第29-30页 |
| (1) 猕猴桃离体愈伤组织再生体系研究 | 第29页 |
| (2) 农杆菌介导的称猴桃遗传转化体系研究 | 第29页 |
| (3) 称猴桃转化植株基因表达与鉴定研究 | 第29页 |
| (4) 不同站木对称猴桃良种米良1号的嫁接效果的初步研究 | 第29-30页 |
| ·研究技术路线 | 第30-31页 |
| 2. 弥猴桃ACC氧化酶基因的克隆与序列分析 | 第31-52页 |
| ·材料和方法 | 第31-39页 |
| ·实验材料与用品 | 第31-33页 |
| ·实验方法 | 第33-39页 |
| ·结果与分析 | 第39-50页 |
| ·猕猴桃总RNA的提取 | 第39页 |
| ·ACC氧化酶cDNA的PCR扩增 | 第39页 |
| ·扩增产物的克隆和重组子的鉴定 | 第39-40页 |
| ·ACC氧化酶cDNA的全序列测定 | 第40-41页 |
| ·ACO基因的序列分析与功能预测 | 第41-50页 |
| ·讨论 | 第50-52页 |
| 3. 弥猴桃ACC氧化酶基因遗传转化试验研究 | 第52-65页 |
| ·材料与方法 | 第52-59页 |
| ·植物材料 | 第52页 |
| ·根癌农杆菌菌株及质粒 | 第52-53页 |
| ·实验用品 | 第53-54页 |
| ·方法 | 第54-59页 |
| ·结果与分析 | 第59-63页 |
| ·诱导培养基对猕猴桃叶片愈伤诱导率的影响 | 第59-60页 |
| ·继代培养基对猕猴桃愈伤组织的影响 | 第60页 |
| ·筛选时潮霉素浓度对米良一号愈伤生长的影响 | 第60页 |
| ·抗性愈伤的分化 | 第60页 |
| ·生根培养基对猕猴桃抗性植株生根的影响 | 第60-61页 |
| ·练苗 | 第61-62页 |
| ·抗性植株的PCR检测 | 第62页 |
| ·实时荧光定量PCR分析 | 第62-63页 |
| ·讨论 | 第63-65页 |
| 4. 阳性再生株系开发利用推广时嫁接用砧木的筛选 | 第65-72页 |
| ·材料与方法 | 第65-67页 |
| ·植物材料 | 第65页 |
| ·总糖与可溶性糖的测定 | 第65-67页 |
| ·维生素C含量的测定 | 第67页 |
| ·结果与分析 | 第67-70页 |
| ·果实可溶性固形物的比较 #56三品种果实的可溶性固形物的测定结果表明(图4-1),与普通砧木比较,高抗3号与米良1号的果实可溶性固形物显著增加,红阳略有增加,翠玉的可溶性固形物低于普通砧木 | 第67页 |
| ·果实总糖含量比较 | 第67-69页 |
| ·果实可溶性糖含量比较 | 第69页 |
| ·果实维生素C含量比较 | 第69页 |
| ·果实总酸含量 | 第69页 |
| ·糖酸比值比较 | 第69-70页 |
| ·讨论与小结 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-89页 |
| 学术成果 | 第89-91页 |
| 致谢 | 第91页 |