| 中文摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-15页 |
| 1 引言 | 第15-18页 |
| 2 实验材料 | 第18-21页 |
| ·实验动物与细胞 | 第18页 |
| ·主要实验试剂及耗材 | 第18-19页 |
| ·主要实验仪器 | 第19页 |
| ·主要实验试剂的配制 | 第19-20页 |
| ·引物 | 第20-21页 |
| 3 实验方法 | 第21-28页 |
| ·心脏组织RNA的提取 | 第21-22页 |
| ·RNA的提取 | 第21-22页 |
| ·测定RNA浓度 | 第22页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测RNA质量 | 第22页 |
| ·逆转录合成cDNA第一链 | 第22-23页 |
| ·cDNA的合成 | 第22-23页 |
| ·测定cDNA浓度 | 第23页 |
| ·Q-PCR检测小鼠心脏组织NRF-1-L,NRF-1-S,Lias,Tom40,cytochromeb,MCAD,PGC-1α的mRNA表达情况 | 第23页 |
| ·心脏组织甘油三酯含量的测定 | 第23-24页 |
| ·稳转细胞系的建立 | 第24-26页 |
| ·P19CL6细胞的培养 | 第24-25页 |
| ·细胞培养 | 第24页 |
| ·细胞冻存 | 第24-25页 |
| ·细胞复苏 | 第25页 |
| ·脂质体方法转染细胞 | 第25页 |
| ·G418筛选稳转细胞系 | 第25-26页 |
| ·MTT方法测定相对活细胞数 | 第26页 |
| ·细胞形态学观察 | 第26-27页 |
| ·流式细胞术检测细胞周期 | 第27页 |
| ·统计学分析 | 第27-28页 |
| 4 实验结果 | 第28-42页 |
| ·非诺贝特对NRF-1-L和NRF-1-S基因表达的作用 | 第28-29页 |
| ·非诺贝特对Tom40和Lias基因表达的作用 | 第29页 |
| ·非诺贝特上调细胞色素b和MCAD基因的表达 | 第29-30页 |
| ·非诺贝特下调PGC1-α的表达 | 第30-31页 |
| ·非诺贝特导致心室脂肪积累 | 第31-32页 |
| ·不同浓度胰岛素作用24h对P19CL6细胞及PPARa和GATA6稳转P19CL6细胞增殖的影响 | 第32-35页 |
| ·不同浓度胰岛素作用24h对P19CL6细胞增殖的影响 | 第32-33页 |
| ·不同浓度胰岛素作用24h对PPARa稳转P19CL6细胞增殖的影响 | 第33-34页 |
| ·不同浓度胰岛素作用24h对GATA6稳转P19CL6细胞增殖的影响 | 第34-35页 |
| ·不同浓度胰岛素作用24h对P19CL6细胞及PPARa和GATA6稳转P19CL6细胞的形态学观察 | 第35-38页 |
| ·不同浓度胰岛素作用24h对P19CL6细胞的形态学观察 | 第35-36页 |
| ·不同浓度胰岛素作用24h对PPARa稳转P19CL6细胞的形态学观察 | 第36-37页 |
| ·不同浓度胰岛素作用24h对GATA6稳转P19CL6细胞的形态学观察 | 第37-38页 |
| ·流式细胞术检测不同浓度胰岛素作用24h对P19CL6细胞及PPARa和GATA6稳转P19CL6细胞周期的影响 | 第38-42页 |
| ·流式细胞术检测不同浓度胰岛素作用24h对P19CL6细胞周期的影响 | 第38-39页 |
| ·流式细胞术检测不同浓度胰岛素作用24h对GATA6稳转P19CL6细胞周期的影响 | 第39-40页 |
| ·流式细胞术检测不同浓度胰岛素作用24h对PPARa稳转P19CL6细胞周期的影响 | 第40-42页 |
| 5 讨论 | 第42-47页 |
| 6 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 综述 | 第52-65页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| 中英文缩略词表 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 个人简历 | 第67页 |
