| 中文摘要 | 第1-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 1 引言 | 第10-18页 |
| ·禽流感病毒（AIV）简介 | 第10-12页 |
| ·AIV 形态结构 | 第10-11页 |
| ·AIV 生物学特性 | 第11页 |
| ·高致病性禽流感病毒（HPAIV）的生物学特性 | 第11-12页 |
| ·HPAI 的危害及公共卫生学意义 | 第12-15页 |
| ·高致病性禽流感的诊断方法及研究进展 | 第15-16页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第16-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-25页 |
| ·材料 | 第18-19页 |
| ·病毒 | 第18页 |
| ·单抗 | 第18页 |
| ·实验动物 | 第18页 |
| ·实验用阴阳性对照抗原 | 第18页 |
| ·主要仪器设备及耗材 | 第18页 |
| ·主要试剂和溶液 | 第18-19页 |
| ·实验方法 | 第19-25页 |
| ·多克隆抗体的制备 | 第19-20页 |
| ·抗原捕捉ELISA 方法的建立 | 第20-22页 |
| ·检测病毒尿囊液阴阳性判定标准的确定 | 第22页 |
| ·特异性交叉试验 | 第22页 |
| ·已知阳性尿囊液夹心ELISA 效价的测定 | 第22页 |
| ·H5 亚型高致病性禽流感病毒人工感染样本的检测 | 第22页 |
| ·人工感染样本阴阳性判定标准的确定及检测靶器官的选择 | 第22页 |
| ·敏感性试验 | 第22-23页 |
| ·重复性试验 | 第23页 |
| ·试剂盒的组装及保存期试验 | 第23-25页 |
| 3 结果与分析 | 第25-51页 |
| ·单抗和酶标抗体最佳结合稀释度的确定 | 第25-26页 |
| ·抗原和单抗最佳结合稀释度的确定 | 第26页 |
| ·多抗和抗原最佳结合稀释度的确定 | 第26-27页 |
| ·捕获抗体和单抗最佳稀释度的确定 | 第27-28页 |
| ·包被液种类的选择 | 第28-29页 |
| ·包被时间的选择 | 第29页 |
| ·不同封闭液的选择 | 第29-30页 |
| ·封闭时间的确定 | 第30-31页 |
| ·单抗作用时间的确定 | 第31-32页 |
| ·酶标抗体作用时间的确定 | 第32-33页 |
| ·检测病毒尿囊液阴阳性判定标准的确定 | 第33-34页 |
| ·特异性交叉试验 | 第34页 |
| ·已知阳性尿囊液夹心ELISA 效价的测定 | 第34-35页 |
| ·H5 亚型高致病性禽流感病毒人工感染样本的检测 | 第35-38页 |
| ·人工感染样本阴阳性判定标准的确定及检测靶器官的选择 | 第38-41页 |
| ·敏感性实验 | 第41-42页 |
| ·重复性实验 | 第42-44页 |
| ·试剂盒保存期试验 | 第44-49页 |
| ·酶标板的保存期试验 | 第44-46页 |
| ·阳性对照抗原的灭活及保存 | 第46-47页 |
| ·单抗和酶标二抗的保存及稳定性试验 | 第47-48页 |
| ·试剂盒整体保存期试验 | 第48-49页 |
| ·小结 | 第49-51页 |
| ·应用抗原捕捉ELISA 方法检测临床组织样本的操作步骤 | 第49-50页 |
| ·阴阳性判定标准 | 第50-51页 |
| 4 讨论 | 第51-54页 |
| ·关于抗原捕捉ELISA 检测方法的建立 | 第51-52页 |
| ·技术基础 | 第51页 |
| ·可行性 | 第51页 |
| ·应用前景 | 第51-52页 |
| ·ELISA 反应条件的优化 | 第52-54页 |
| ·ELISA 反应形式的选择 | 第52页 |
| ·包被液的选择 | 第52页 |
| ·温育温度的选择 | 第52-53页 |
| ·封闭液的选择 | 第53页 |
| ·试剂盒的稳定保存 | 第53-54页 |
| 5 结论 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-61页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文 | 第61页 |
