| 中文摘要 | 第1-6页 |
| 英文摘要 | 第6-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 1 材料、试剂和仪器 | 第13-16页 |
| ·细胞培养 | 第13页 |
| ·主要试剂 | 第13页 |
| ·主要试剂配制 | 第13-15页 |
| ·主要仪器 | 第15-16页 |
| 2 实验方法与步骤 | 第16-23页 |
| ·组织样本收集 | 第16页 |
| ·细胞培养及药物处理 | 第16页 |
| ·基因组DNA 提取及甲基化特异性PCR 分析 | 第16-20页 |
| ·组织DNA 提取 | 第16-17页 |
| ·细胞DNA 提取 | 第17页 |
| ·基因组DNA 重亚硫酸钠修饰 | 第17-18页 |
| ·甲基化特异性PCR（Methylation-specific PCR，MSP）分析 | 第18-20页 |
| ·逆转录聚合酶链反应（RT-PCR）检测相关基因的表达 | 第20-22页 |
| ·Trizol 提取细胞总RNA | 第20页 |
| ·细胞总RNA 完整性的鉴定 | 第20-21页 |
| ·逆转录合成cDNA 第一链 | 第21页 |
| ·聚合酶链反应检测细胞系中SFRP1、SFRP2、SFRP5、DKK1、WIF-1 及CCND1 的基因表达水平 | 第21-22页 |
| ·MTT 法测定药物对胶质瘤细胞增殖的影响 | 第22-23页 |
| ·软琼脂集落形成实验 | 第23页 |
| ·统计学分析 | 第23页 |
| 3 实验结果 | 第23-29页 |
| ·神经胶质瘤组织样本甲基化检测 | 第23-25页 |
| ·胶质瘤细胞系A172、U251 甲基化检测 | 第25-26页 |
| ·去甲基化处理后5 个抑制基因的表达 | 第26页 |
| ·去甲基化处理后β-catenin 靶基因改变 | 第26-27页 |
| ·去甲基化药物对细胞增殖能力的影响 | 第27-29页 |
| 结论 | 第29-30页 |
| 讨论 | 第30-33页 |
| 参考文献 | 第33-36页 |
| 文献综述 | 第36-48页 |
| 附录 | 第48-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
