| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-20页 |
| 1.1 乳酸菌胞外多糖简介 | 第11页 |
| 1.2 产胞外多糖的乳酸菌及其胞外多糖分类 | 第11-13页 |
| 1.3 影响乳酸菌胞外多糖产量的因素 | 第13-14页 |
| 1.3.1 培养基成分组成的影响 | 第13页 |
| 1.3.2 培养条件的影响 | 第13-14页 |
| 1.4 乳酸菌胞外多糖的分离纯化 | 第14-16页 |
| 1.4.1 乳酸菌胞外多糖的分离提取方法 | 第14-15页 |
| 1.4.2 乳酸菌胞外多糖的纯化方法 | 第15-16页 |
| 1.5 乳酸菌胞外多糖结构的研究 | 第16页 |
| 1.6 乳酸菌胞外多糖的功能特性 | 第16-18页 |
| 1.6.1 乳酸菌胞外多糖的物理学特性 | 第16-17页 |
| 1.6.2 乳酸菌胞外多糖的生物学特性 | 第17-18页 |
| 1.7 本文研究意义和内容 | 第18-20页 |
| 1.7.1 研究目的及意义 | 第18-19页 |
| 1.7.2 研究内容 | 第19-20页 |
| 第二章 材料与方法 | 第20-27页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第20页 |
| 2.1.2 实验药品及仪器 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-26页 |
| 2.2.1 多糖的提取方法 | 第21页 |
| 2.2.2 多糖的糖含量及蛋白含量测定 | 第21-22页 |
| 2.2.3 MTS法测多糖对Caco-2细胞的抑制率 | 第22页 |
| 2.2.4 12号多糖提取培养条件优化 | 第22-24页 |
| 2.2.5 多糖的分离纯化及结构研究 | 第24-26页 |
| 2.3 数据的统计分析方法 | 第26-27页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第27-44页 |
| 3.1 四种乳酸菌胞外多糖的提取 | 第27页 |
| 3.2 多糖中糖含量及蛋白浓度的测定 | 第27-28页 |
| 3.2.1 标准曲线的测定 | 第27页 |
| 3.2.2 样品糖含量及蛋白含量的测定 | 第27-28页 |
| 3.3 多糖对Caco-2细胞的抑制作用 | 第28-30页 |
| 3.3.1 不同菌株所产胞外多糖对Caco-2细胞增殖的抑制作用 | 第28页 |
| 3.3.2 不同浓度的12号多糖对Caco-2细胞增殖的抑制作用 | 第28-30页 |
| 3.4 12号乳酸菌产胞外多糖的培养条件优化 | 第30-37页 |
| 3.4.1 碳源优化 | 第30-31页 |
| 3.4.2 培养时间优化 | 第31-32页 |
| 3.4.3 培养温度优化 | 第32-33页 |
| 3.4.4 培养液初始pH优化 | 第33-34页 |
| 3.4.5 接种量优化 | 第34-35页 |
| 3.4.6 正交实验优化培养条件 | 第35-37页 |
| 3.5 多糖的分离纯化及结构研究 | 第37-44页 |
| 3.5.1 多糖DEAE-SepharoseFastFlow离子柱纯化 | 第37-38页 |
| 3.5.2 多糖SepharoseCL-6B凝胶柱纯化 | 第38-39页 |
| 3.5.3 多糖纯度检测—紫外扫描 | 第39-40页 |
| 3.5.4 多糖分子量的测定 | 第40页 |
| 3.5.5 间羟基联苯比色法测定纯化后多糖样品糖醛酸的含量 | 第40-41页 |
| 3.5.6 硫酸钡比浊法测定纯化后多糖样品中硫酸基的含量 | 第41页 |
| 3.5.7 单糖组成分析 | 第41-42页 |
| 3.5.8 红外扫描 | 第42-44页 |
| 第四章 结论与展望 | 第44-46页 |
| 4.1 主要结论 | 第44-45页 |
| 4.2 展望 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 附录 | 第54-56页 |
