| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第10-14页 |
| 1.1 课题背景 | 第10-11页 |
| 1.2 选题意义 | 第11页 |
| 1.3 酶法提取银杏黄酮的简介 | 第11-12页 |
| 1.3.1 纤维素酶 | 第11页 |
| 1.3.2 果胶酶 | 第11-12页 |
| 1.3.3 蛋白酶 | 第12页 |
| 1.4 国内外对黄酮提取工艺的研究进展 | 第12-13页 |
| 1.5 课题研究内容 | 第13-14页 |
| 第2章 分光光度法分析银杏黄酮 | 第14-19页 |
| 2.1 引言 | 第14页 |
| 2.2 材料与方法 | 第14-15页 |
| 2.2.1 仪器与试剂 | 第14页 |
| 2.2.2 芦丁标准溶液的配制 | 第14页 |
| 2.2.3 参考定量操作步骤 | 第14-15页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第15-18页 |
| 2.3.1 测定波长的选择 | 第15页 |
| 2.3.2 乙醇浓度对吸光度值的影响 | 第15页 |
| 2.3.3 显色试剂加入时间对吸光度值的影响 | 第15-17页 |
| 2.3.4 试剂加入量对吸光度值的影响 | 第17页 |
| 2.3.5 方法的线性关系 | 第17页 |
| 2.3.6 样品回收率试验 | 第17-18页 |
| 2.4 本章小结 | 第18-19页 |
| 第3章 乙醇-水混合溶剂循环提取银杏叶中银杏黄酮的工艺研究 | 第19-26页 |
| 3.1 引言 | 第19页 |
| 3.2 材料与方法 | 第19-22页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第19-20页 |
| 3.2.2 标准溶液的配制 | 第20页 |
| 3.2.3 样品前处理 | 第20页 |
| 3.2.4 银杏叶总黄酮含量的测定 | 第20页 |
| 3.2.5 评价指标 | 第20-21页 |
| 3.2.6 乙醇浓度对提取率的影响 | 第21页 |
| 3.2.7 温度对提取率的影响 | 第21页 |
| 3.2.8 提取时间对提取率的影响 | 第21页 |
| 3.2.9 料液比对提取率的影响 | 第21-22页 |
| 3.2.10 提取遍数对提取率的影响 | 第22页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第22-25页 |
| 3.3.1 乙醇浓度对银杏黄酮提取率的影响 | 第22页 |
| 3.3.2 水浴温度对银杏黄酮提取率的影响 | 第22-23页 |
| 3.3.3 提取时间对银杏黄酮提取率的影响 | 第23页 |
| 3.3.4 料液比对银杏黄酮提取率的影响 | 第23-24页 |
| 3.3.5 提取遍数对银杏黄酮提取率的影响 | 第24-25页 |
| 3.4 本章小结 | 第25-26页 |
| 第4章 酶法提取银杏叶中银杏黄酮的工艺研究 | 第26-38页 |
| 4.1 引言 | 第26页 |
| 4.2 材料与方法 | 第26-28页 |
| 4.2.1 仪器与试剂 | 第26-27页 |
| 4.2.2 酶解法提取银杏黄酮 | 第27页 |
| 4.2.3 评价指标 | 第27页 |
| 4.2.4 单因素试验 | 第27-28页 |
| 4.2.5 正交试验 | 第28页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第28-36页 |
| 4.3.1 不同时期银杏叶中总黄酮的含量 | 第28页 |
| 4.3.2 酶种类对银杏叶黄酮提取率的影响 | 第28-29页 |
| 4.3.3 酶的用量对银杏叶黄酮提取率的影响 | 第29-31页 |
| 4.3.4 料液比对银杏叶黄酮提取率的影响 | 第31页 |
| 4.3.5 pH对银杏叶黄酮提取率的影响 | 第31-32页 |
| 4.3.6 转速对银杏叶黄酮提取率的影响 | 第32页 |
| 4.3.7 提取温度对银杏叶黄酮提取率的影响 | 第32-33页 |
| 4.3.8 提取时间对银杏叶黄酮提取率的影响 | 第33-34页 |
| 4.3.9 银杏叶特征尺寸对黄酮提取率的影响 | 第34-35页 |
| 4.3.10 正交试验 | 第35-36页 |
| 4.4 本章小结 | 第36-38页 |
| 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |
| 个人简历 | 第43页 |