| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5页 |
| 英文缩写与注释 | 第8-9页 |
| 前言 | 第9-19页 |
| 第1章 HA-C-Niosomes的制备及理化性质表征 | 第19-31页 |
| 1.1 仪器与试剂 | 第19页 |
| 1.1.1 材料 | 第19页 |
| 1.1.2 仪器 | 第19页 |
| 1.2 实验方法 | 第19-22页 |
| 1.2.1 类脂质体的制备 | 第19-20页 |
| 1.2.2 类脂质体处方单因素考察 | 第20页 |
| 1.2.3 类脂质体工艺单因素考察 | 第20-21页 |
| 1.2.4 阳离子类脂质体的制备 | 第21-22页 |
| 1.2.5 HA修饰的阳离子类脂质体的制备 | 第22页 |
| 1.2.6 类脂质体的表征 | 第22页 |
| 1.3 结果与讨论 | 第22-29页 |
| 1.3.1 类脂质体处方单因素考察 | 第22-24页 |
| 1.3.2 类脂质体工艺单因素考察 | 第24-26页 |
| 1.3.3 阳离子类脂质体的制备 | 第26-27页 |
| 1.3.4 HA修饰的阳离子类脂质体的制备 | 第27-28页 |
| 1.3.5 载体的形态观察 | 第28-29页 |
| 1.4 本章小结 | 第29-31页 |
| 第2章 HA-C-Niosomes载体细胞摄取水平研究 | 第31-38页 |
| 2.1 仪器与试剂 | 第31页 |
| 2.1.1 试剂 | 第31页 |
| 2.1.2 仪器 | 第31页 |
| 2.1.3 细胞 | 第31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-33页 |
| 2.2.1 MTT法测定载体毒性 | 第32页 |
| 2.2.2 载基因载体的制备 | 第32-33页 |
| 2.2.3 共聚焦观察载体的体外摄取 | 第33页 |
| 2.2.4 流式分析载体的体外摄取 | 第33页 |
| 2.2.5 溶酶体共定位研究 | 第33页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第33-37页 |
| 2.3.1 载体对细胞活性的影响 | 第33-34页 |
| 2.3.2 载体的细胞摄取情况研究 | 第34-36页 |
| 2.3.3 溶酶体共定位 | 第36-37页 |
| 2.4 本章小结 | 第37-38页 |
| 第3章 HA-C-Niosomes的体内外转染效果评价 | 第38-46页 |
| 3.1 仪器与试剂 | 第38-39页 |
| 3.1.1 试剂材料 | 第38页 |
| 3.1.2 仪器 | 第38页 |
| 3.1.3 动物 | 第38-39页 |
| 3.2 实验方法 | 第39-41页 |
| 3.2.1 pEGFP的包载 | 第39页 |
| 3.2.2 琼脂糖凝胶电泳 | 第39页 |
| 3.2.3 制备HA-C-niosomes/pEGFP | 第39-40页 |
| 3.2.4 载体对质粒的保护 | 第40页 |
| 3.2.5 细胞体外转染评价 | 第40页 |
| 3.2.6 动物体内转染效率研究 | 第40-41页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第41-44页 |
| 3.3.1 凝胶条带结果 | 第41-42页 |
| 3.3.2 载基因载体的理化性质 | 第42页 |
| 3.3.3 载体对质粒的保护 | 第42-43页 |
| 3.3.4 细胞体外转染评价 | 第43-44页 |
| 3.3.5 动物体内转染效果 | 第44页 |
| 3.4 本章小结 | 第44-46页 |
| 结论与展望 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 攻读学位期间所发表的学术论文 | 第54页 |
