摘要 | 第7-9页 |
ABSTRACT | 第9-11页 |
主要缩写符号对照表 | 第12-13页 |
第1章 文献综述 | 第13-29页 |
1.1 选题背景及意义 | 第13-14页 |
1.2 细菌检测的研究现状 | 第14-22页 |
1.2.1 基于培养模式的传统检测方法 | 第14页 |
1.2.2 基于分子生物学的检测方法 | 第14页 |
1.2.3 基于分子识别模式的检测方法 | 第14-22页 |
1.3 分子发光分析法 | 第22-26页 |
1.3.1 生物发光分析法 | 第22-23页 |
1.3.2 荧光分析法 | 第23-26页 |
1.4 磁性微球分离技术 | 第26-27页 |
1.5 研究思路及创新点 | 第27-29页 |
第2章 基于达托霉素亲和作用的生物发光分析法检测革兰氏阳性活菌 | 第29-41页 |
2.1 引言 | 第29-30页 |
2.2 实验部分 | 第30-32页 |
2.2.1 试剂和材料 | 第30-31页 |
2.2.2 仪器 | 第31页 |
2.2.3 细菌的培养和计数 | 第31页 |
2.2.4 dapt-MBs的制备 | 第31-32页 |
2.2.5 FITC-dapt的制备 | 第32页 |
2.2.6 dapt-MBs捕获率的测定 | 第32页 |
2.2.7 FITC-dapt对细菌染色的荧光表征 | 第32页 |
2.2.8 革兰氏阳性活菌的检测 | 第32页 |
2.3 结果与讨论 | 第32-39页 |
2.3.1 利用dapt-MBs检测革兰氏阳性菌的原理 | 第33页 |
2.3.2 达托霉素与革兰氏阳性菌结合作用的分析 | 第33页 |
2.3.3 dapt-MBs的功能分析 | 第33-35页 |
2.3.4 检测条件的优化 | 第35-36页 |
2.3.5 特异性分析 | 第36-37页 |
2.3.6 革兰氏阳性活菌的检测 | 第37页 |
2.3.7 实际样品检测 | 第37-39页 |
2.4 结论 | 第39-41页 |
第3章 基于达托霉素功能化磁珠联合溶葡萄球菌酶构建生物发光分析法检测葡萄球菌 | 第41-51页 |
3.1 引言 | 第41-42页 |
3.2 实验部分 | 第42-44页 |
3.2.1 试剂和材料 | 第42页 |
3.2.2 仪器 | 第42-43页 |
3.2.3 细菌的培养和计数 | 第43页 |
3.2.4 dapt-MBs的制备 | 第43页 |
3.2.5 FITC-dapt的制备 | 第43页 |
3.2.6 dapt-MBs捕获率的测定 | 第43-44页 |
3.2.7 FITC-dapt对细菌染色的荧光表征 | 第44页 |
3.2.8 葡萄球菌的检测 | 第44页 |
3.3 结果与讨论 | 第44-50页 |
3.3.1 基于dapt-MBs联合溶葡萄球菌酶检测葡萄球菌的原理 | 第44-45页 |
3.3.2 达托霉素与葡萄球菌结合作用的分析 | 第45页 |
3.3.3 dapt-MBs的功能分析 | 第45-46页 |
3.3.4 检测条件的优化 | 第46-47页 |
3.3.5 特异性分析 | 第47-48页 |
3.3.6 葡萄球菌的检测 | 第48-49页 |
3.3.7 实际样品检测 | 第49-50页 |
3.4 结论 | 第50-51页 |
第4章 基于双位点识别的荧光分析法检测金黄色葡萄球菌 | 第51-59页 |
4.1 引言 | 第51页 |
4.2 实验部分 | 第51-53页 |
4.2.1 试剂和材料 | 第51-52页 |
4.2.2 仪器 | 第52页 |
4.2.3 细菌的培养和计数 | 第52页 |
4.2.4 FITC-dapt的制备 | 第52-53页 |
4.2.5 双位点识别的荧光表征 | 第53页 |
4.2.6 金黄色葡萄球菌的检测 | 第53页 |
4.3 结果与讨论 | 第53-58页 |
4.3.1 基于双位点识别的荧光分析法检测金黄色葡萄球菌的原理 | 第53-54页 |
4.3.2 达托霉素与猪IgG对金黄色葡萄球菌的结合作用 | 第54-56页 |
4.3.3 检测条件的优化 | 第56页 |
4.3.4 特异性分析 | 第56-57页 |
4.3.5 金黄色葡萄球菌的检测 | 第57-58页 |
4.4 实际样品检测 | 第58页 |
4.5 结论 | 第58-59页 |
参考文献 | 第59-71页 |
致谢 | 第71-73页 |
发表论文一览表 | 第73-74页 |