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基于达托霉素亲和作用的革兰氏阳性菌检测新方法

摘要第7-9页
ABSTRACT第9-11页
主要缩写符号对照表第12-13页
第1章 文献综述第13-29页
    1.1 选题背景及意义第13-14页
    1.2 细菌检测的研究现状第14-22页
        1.2.1 基于培养模式的传统检测方法第14页
        1.2.2 基于分子生物学的检测方法第14页
        1.2.3 基于分子识别模式的检测方法第14-22页
    1.3 分子发光分析法第22-26页
        1.3.1 生物发光分析法第22-23页
        1.3.2 荧光分析法第23-26页
    1.4 磁性微球分离技术第26-27页
    1.5 研究思路及创新点第27-29页
第2章 基于达托霉素亲和作用的生物发光分析法检测革兰氏阳性活菌第29-41页
    2.1 引言第29-30页
    2.2 实验部分第30-32页
        2.2.1 试剂和材料第30-31页
        2.2.2 仪器第31页
        2.2.3 细菌的培养和计数第31页
        2.2.4 dapt-MBs的制备第31-32页
        2.2.5 FITC-dapt的制备第32页
        2.2.6 dapt-MBs捕获率的测定第32页
        2.2.7 FITC-dapt对细菌染色的荧光表征第32页
        2.2.8 革兰氏阳性活菌的检测第32页
    2.3 结果与讨论第32-39页
        2.3.1 利用dapt-MBs检测革兰氏阳性菌的原理第33页
        2.3.2 达托霉素与革兰氏阳性菌结合作用的分析第33页
        2.3.3 dapt-MBs的功能分析第33-35页
        2.3.4 检测条件的优化第35-36页
        2.3.5 特异性分析第36-37页
        2.3.6 革兰氏阳性活菌的检测第37页
        2.3.7 实际样品检测第37-39页
    2.4 结论第39-41页
第3章 基于达托霉素功能化磁珠联合溶葡萄球菌酶构建生物发光分析法检测葡萄球菌第41-51页
    3.1 引言第41-42页
    3.2 实验部分第42-44页
        3.2.1 试剂和材料第42页
        3.2.2 仪器第42-43页
        3.2.3 细菌的培养和计数第43页
        3.2.4 dapt-MBs的制备第43页
        3.2.5 FITC-dapt的制备第43页
        3.2.6 dapt-MBs捕获率的测定第43-44页
        3.2.7 FITC-dapt对细菌染色的荧光表征第44页
        3.2.8 葡萄球菌的检测第44页
    3.3 结果与讨论第44-50页
        3.3.1 基于dapt-MBs联合溶葡萄球菌酶检测葡萄球菌的原理第44-45页
        3.3.2 达托霉素与葡萄球菌结合作用的分析第45页
        3.3.3 dapt-MBs的功能分析第45-46页
        3.3.4 检测条件的优化第46-47页
        3.3.5 特异性分析第47-48页
        3.3.6 葡萄球菌的检测第48-49页
        3.3.7 实际样品检测第49-50页
    3.4 结论第50-51页
第4章 基于双位点识别的荧光分析法检测金黄色葡萄球菌第51-59页
    4.1 引言第51页
    4.2 实验部分第51-53页
        4.2.1 试剂和材料第51-52页
        4.2.2 仪器第52页
        4.2.3 细菌的培养和计数第52页
        4.2.4 FITC-dapt的制备第52-53页
        4.2.5 双位点识别的荧光表征第53页
        4.2.6 金黄色葡萄球菌的检测第53页
    4.3 结果与讨论第53-58页
        4.3.1 基于双位点识别的荧光分析法检测金黄色葡萄球菌的原理第53-54页
        4.3.2 达托霉素与猪IgG对金黄色葡萄球菌的结合作用第54-56页
        4.3.3 检测条件的优化第56页
        4.3.4 特异性分析第56-57页
        4.3.5 金黄色葡萄球菌的检测第57-58页
    4.4 实际样品检测第58页
    4.5 结论第58-59页
参考文献第59-71页
致谢第71-73页
发表论文一览表第73-74页

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