| 摘要 | 第3-7页 |
| ABSTRACT | 第7-10页 |
| 缩略词 | 第11-15页 |
| 第一章 前言 | 第15-23页 |
| 第一节 缺血性脑卒中及其后遗症治疗现状 | 第15-19页 |
| 1.1.1 缺血性脑卒中及其后遗症 | 第15页 |
| 1.1.2 恢复期常用治疗方法 | 第15-18页 |
| 1.1.3 结语 | 第18-19页 |
| 第二节 Notch信号通路对神经干细胞影响的研究进展 | 第19-23页 |
| 1.2.1 Notch通路的组成及功能概述 | 第19-20页 |
| 1.2.2 Notch信号通路对神经干细胞的影响 | 第20-22页 |
| 1.2.3 Notch相关基因变化 | 第22页 |
| 1.2.4 结语 | 第22-23页 |
| 第二章 白脉散有效成分组BMECG体外促进神经干细胞增殖能力的研究 | 第23-42页 |
| 第一节 实验材料 | 第23-24页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第23页 |
| 2.1.2 药品和试剂 | 第23页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第23-24页 |
| 2.1.4 主要实验用品 | 第24页 |
| 2.1.5 溶液的配制 | 第24页 |
| 第二节 神经干细胞的分离、培养及鉴定 | 第24-30页 |
| 2.2.1 体外大鼠神经干细胞培养 | 第24-25页 |
| 2.2.2 体外培养大鼠神经干细胞鉴定 | 第25-26页 |
| 2.2.3 单细胞悬液的制备 | 第26页 |
| 2.2.4 大鼠神经干细胞OGD/R损伤模型的建立 | 第26-28页 |
| 2.2.5 BMECG剂量初步筛选 | 第28-29页 |
| 2.2.6 BMECG促体外培养大鼠神经干细胞损伤后增殖作用 | 第29-30页 |
| 2.2.7 BMECG诱导NSCs增殖的基因芯片研究 | 第30页 |
| 第三节 实验结果 | 第30-39页 |
| 2.3.1 形态学观察鉴定 | 第30-31页 |
| 2.3.2 NSCs单细胞悬液制备方法选择 | 第31-32页 |
| 2.3.3 换液与DMSO对实验的影响 | 第32-33页 |
| 2.3.4 BMECG对损伤后NSCs促增殖作用剂量筛选 | 第33页 |
| 2.3.5 BMECG对体外培养大鼠NSCs促增殖作用 | 第33-37页 |
| 2.3.6 基因芯片分析 | 第37-39页 |
| 第四节 讨论 | 第39-41页 |
| 第五节 小结 | 第41-42页 |
| 第三章 白脉散有效成分组BMECG在体促进神经干细胞增殖能力的研究 | 第42-59页 |
| 第一节 实验材料 | 第42-43页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第42页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第42页 |
| 3.1.3 药物和试剂 | 第42-43页 |
| 3.1.4 器材 | 第43页 |
| 3.1.5 溶液的配制 | 第43页 |
| 第二节 实验方法 | 第43-48页 |
| 3.2.1 小鼠全脑缺血模型的建立 | 第43-44页 |
| 3.2.2 小鼠分组给药 | 第44页 |
| 3.2.3 检测指标及方法 | 第44-48页 |
| 第三节 实验结果 | 第48-55页 |
| 3.3.1 实验小鼠一般情况及死亡率影响 | 第48页 |
| 3.3.2 BMECG对全脑缺血小鼠行为学功能的影响 | 第48-49页 |
| 3.3.3 BMECG对全脑缺血小鼠脑组织病理形态的影响 | 第49-50页 |
| 3.3.4 BMECG对全脑缺血小鼠脑组织Nestin表达的影响 | 第50-51页 |
| 3.3.5 BMECG对全脑缺血小鼠脑组织脑含水量的影响 | 第51-52页 |
| 3.3.6 总RNA提取结果 | 第52页 |
| 3.3.7 RT-PCR检测BMECG对notch1 mRNA表达的影响 | 第52-53页 |
| 3.3.8 RT-PCR检测BMECG对musashi1 mRNA表达的影响 | 第53-54页 |
| 3.3.9 RT-PCR检测BMECG对numb mRNA表达的影响 | 第54-55页 |
| 第四节 讨论 | 第55-57页 |
| 第五节 结论 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 攻读学位期间发表的学术成果目录 | 第65页 |
