摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
符号和缩略词说明 | 第14-15页 |
第一章 绪论 | 第15-23页 |
1.1 BRCA1基因概述 | 第15-17页 |
1.1.1 BRCA1基因简介 | 第15页 |
1.1.2 BRCA1基因的结构 | 第15-16页 |
1.1.3 BRCA1基因的功能 | 第16-17页 |
1.2 食管癌 | 第17-19页 |
1.2.1 食管癌简介 | 第18页 |
1.2.2 食管癌患病的危险因素 | 第18-19页 |
1.2.3 食管癌的治疗 | 第19页 |
1.3 单核苷酸多态性 | 第19-21页 |
1.3.1 单核苷酸多态性介绍 | 第20页 |
1.3.2 单核苷酸多态性的检测方法 | 第20-21页 |
1.4 BRCA1基因与食管癌 | 第21页 |
1.5 miRNA | 第21页 |
1.6 立项背景与研究意义 | 第21-22页 |
1.7 本论文的主要研究内容 | 第22-23页 |
第二章 BRCA1基因多态性与中国人群食管鳞癌患病风险的相关性研究 | 第23-49页 |
2.1 实验材料 | 第23-26页 |
2.1.1 实验试剂 | 第23-24页 |
2.1.2 实验设备 | 第24-25页 |
2.1.3 实验耗材 | 第25-26页 |
2.1.4 实验研究对象 | 第26页 |
2.2 实验方法 | 第26-36页 |
2.2.1 血液中全基因组DNA提取 | 第26-29页 |
2.2.1.1 相关溶液的配制 | 第27-28页 |
2.2.1.2 用酚氯仿法提取血液中全基因组DNA具体步骤 | 第28-29页 |
2.2.2 基因分型 | 第29-35页 |
2.2.2.1 PCR-RFLP基因分型原理 | 第29-30页 |
2.2.2.2 PCR反应体系参数以及反应条件优化 | 第30-32页 |
2.2.2.3 限制性内切酶酶切 | 第32-33页 |
2.2.2.4 琼脂糖凝胶电泳 | 第33-35页 |
2.2.3 数据统计和分析 | 第35-36页 |
2.3 实验结果与讨论 | 第36-45页 |
2.3.1 引物设计结果与讨论 | 第36-37页 |
2.3.2 PCR反应条件优化结果与讨论 | 第37-39页 |
2.3.3 酶切条件的优化结果与讨论 | 第39-40页 |
2.3.4 数据统计和分析结果与讨论 | 第40-45页 |
2.3.4.1 食管鳞癌病例组和正常对照组选择性特征资料分布情况的结果与讨论 | 第40-41页 |
2.3.4.2 Hardy-Weinberg平衡检测结果与讨论 | 第41-42页 |
2.3.4.3 BRCA1 rs799917与食管鳞癌患病风险关系的研究结果与讨论 | 第42-44页 |
2.3.4.4 分层分析BRCA1 rs799917基因分型与食管鳞癌患病风险的关系的结果与讨论 | 第44-45页 |
2.4 注意事项 | 第45-47页 |
2.4.1 血液中全基因组DNA提取过程中的注意事项 | 第45页 |
2.4.2 引物设计过程中的注意事项 | 第45页 |
2.4.3 PCR过程中的注意事项 | 第45-47页 |
2.4.4 琼脂糖凝胶电泳过程中的注意事项 | 第47页 |
2.5 本章小结 | 第47-49页 |
第三章 rs799917 T/C与BRCA1表达量之间关联研究 | 第49-61页 |
3.1 实验材料 | 第49-52页 |
3.1.1 实验试剂 | 第49-50页 |
3.1.2 实验设备 | 第50-51页 |
3.1.3 实验耗材 | 第51-52页 |
3.1.4 相关溶液的配制 | 第52页 |
3.1.5 实验研究对象 | 第52页 |
3.2 实验方法 | 第52-57页 |
3.2.1 组织中RNA的提取 | 第52-53页 |
3.2.2 反转录 | 第53-54页 |
3.2.3 实时定量PCR检测BRCA1表达量 | 第54-56页 |
3.2.4 组织中全基因组DNA的提取 | 第56-57页 |
3.2.5 组织样本的基因分型 | 第57页 |
3.2.6 数据统计分析 | 第57页 |
3.3 实验结果与讨论 | 第57-58页 |
3.4 注意事项 | 第58页 |
3.5 本章小结 | 第58-61页 |
第四章 结论、创新点与展望 | 第61-63页 |
4.1 本论文的相关结论 | 第61页 |
4.2 本论文的创新点 | 第61页 |
4.3 展望 | 第61-63页 |
参考文献 | 第63-69页 |
致谢 | 第69-70页 |
研究成果及学术论文 | 第70-71页 |
作者和导师简介 | 第71-72页 |
附件 | 第72-73页 |