| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第9-35页 |
| 1.1 引言 | 第9页 |
| 1.2 肿瘤多药耐药性的机理 | 第9-12页 |
| 1.2.1 膜转运蛋白介导的肿瘤多药耐药 | 第9-10页 |
| 1.2.2 非膜转运蛋白介导的肿瘤多药耐药 | 第10-12页 |
| 1.3 逆转肿瘤多药耐药性 | 第12-14页 |
| 1.3.1 化学药物逆转剂 | 第12-14页 |
| 1.3.2 基因技术逆转MDR | 第14页 |
| 1.4 干扰小RNA技术 | 第14-17页 |
| 1.4.1 小干扰RNA治疗肿瘤的研究现状 | 第14-15页 |
| 1.4.2 小干扰RNA治疗肿瘤面临的挑战 | 第15-17页 |
| 1.5 siRNA传送载体 | 第17-20页 |
| 1.5.1 脂质体和脂质类似物载体 | 第18页 |
| 1.5.2 高分子聚合物载体 | 第18-19页 |
| 1.5.3 siRNA结合物 | 第19-20页 |
| 1.5.4 纳米粒子载体 | 第20页 |
| 1.6 多金属氧酸盐作为阿尔兹海默症（AD）抑制剂的研究 | 第20-25页 |
| 1.6.1 阿尔兹海默症（AD）病理特征及发病机理 | 第20-22页 |
| 1.6.2 Aβ 多肽聚集抑制剂 | 第22-24页 |
| 1.6.3 多金属氧酸盐抑制Aβ 聚集 | 第24-25页 |
| 1.7 本课题的选题意义和研究目的 | 第25-27页 |
| 1.7.1 钌配合物功能化纳米硒作为siRNA载体 | 第25-26页 |
| 1.7.2 纳米硒、纳米钌功能化MIL-101 作为siRNA载体 | 第26页 |
| 1.7.3 多肽修饰的多钼氧酸盐（Mo-POM）作为AD抑制剂 | 第26-27页 |
| 参考文献 | 第27-35页 |
| 第二章 钌配合物-纳米硒荧光复合材料作为siRNA载体及其抗肿瘤活性的研究 | 第35-69页 |
| 2.1 引言 | 第35-37页 |
| 2.2 实验部分 | 第37-45页 |
| 2.2.1 实验仪器与试剂 | 第37-39页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第39-45页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第45-62页 |
| 2.3.1 L-SeNPs, D-SeNPs and Ru@L-SeNPs , Ru@D-SeNPs的合成与表征 | 第45-49页 |
| 2.3.2 BSA蛋白吸附实验 | 第49-50页 |
| 2.3.3 pDNA负载和保护实验 | 第50-52页 |
| 2.3.4 细胞吸收及溶酶体逃逸实验 | 第52-54页 |
| 2.3.5 细胞转染实验 | 第54-55页 |
| 2.3.6 细胞毒性MTT试验和TUNEL检测 | 第55-56页 |
| 2.3.7 多药耐药性的逆转及胞内凋亡信号通路的激活 | 第56-58页 |
| 2.3.8 ROS产生及Caspase依赖型凋亡 | 第58-60页 |
| 2.3.9 体内荧光成像和生物分布 | 第60-61页 |
| 2.3.10 体内抗肿瘤效应 | 第61-62页 |
| 2.4 本章小结 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-69页 |
| 第三章 金属有机骨架化合物作为siRNA载体逆转肿瘤细胞耐药性及其对细胞微管的影响 | 第69-94页 |
| 3.1 引言 | 第69-70页 |
| 3.2 实验部分 | 第70-75页 |
| 3.2.1 实验仪器与试剂 | 第70-71页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第71-75页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第75-88页 |
| 3.3.1 Se@MIL-101 和Ru@MIL-101 的合成与表征 | 第76-77页 |
| 3.3.2 siRNA凝胶电泳实验 | 第77-78页 |
| 3.3.3 细胞吸收及溶酶体逃逸 | 第78-81页 |
| 3.3.4 细胞转染实验 | 第81页 |
| 3.3.5 多药耐药性的逆转 | 第81-83页 |
| 3.3.6 细胞毒性MTT试验和凋亡信号通路的激活 | 第83-85页 |
| 3.3.7 纳米-siRNA载药体系对MCF-7/T细胞骨架的影响 | 第85-87页 |
| 3.3.8 细胞周期阻滞试验 | 第87-88页 |
| 3.3.9 体内抗肿瘤研究 | 第88页 |
| 3.4 本章小结 | 第88-90页 |
| 参考文献 | 第90-94页 |
| 第四章Aβ 靶向多肽功能化的钼多金属盐酸盐纳米在阿尔兹海默症中的应用 | 第94-115页 |
| 4.1 引言 | 第94-95页 |
| 4.2 实验部分 | 第95-100页 |
| 4.2.1 实验仪器与试剂 | 第95-96页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第96-100页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第100-111页 |
| 4.3.1 Mo-POM和Peptide@Mo-POM的合成与表征 | 第100-101页 |
| 4.3.2 Peptide@Mo-POM抑制Aβ40 聚集实验 | 第101-103页 |
| 4.3.3 Aβ40 纤维化的抑制和降解实验 | 第103-105页 |
| 4.3.4 Peptide@Mo-POM抑制Aβ40 聚集的光谱学研究 | 第105-107页 |
| 4.3.5 Aβ40 纤维诱导PC12 细胞凋亡 | 第107-108页 |
| 4.3.6 Peptide@Mo-POM对Aβ40 纤维诱导PC12 细胞活性氧水平的影响 | 第108-109页 |
| 4.3.7 Peptide@Mo-POM透过血脑屏障BBB的能力 | 第109-111页 |
| 4.4 本章小结 | 第111-112页 |
| 参考文献 | 第112-115页 |
| 硕士期间论文发表情况 | 第115-116页 |
| 致谢 | 第116页 |
