| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 前言 | 第12-20页 |
| 1 拟除虫菊酯的特点及危害 | 第12页 |
| 2 拟除虫菊酯的毒性与降解 | 第12-13页 |
| 3 降解拟除虫菊酯的微生物 | 第13页 |
| 4 影响拟除虫菊酯生物降解的因素 | 第13-14页 |
| 4.1 温度和pH | 第13页 |
| 4.2 重金属离子对降解的影响 | 第13-14页 |
| 4.3 碳源和氮源 | 第14页 |
| 4.4 农药浓度 | 第14页 |
| 5 拟除虫菊酯农药的降解途径 | 第14-15页 |
| 6 拟除虫菊酯微生物降解的降解机理 | 第15-17页 |
| 6.1 拟除虫菊酯农药微生物降解酶 | 第15-16页 |
| 6.2 拟除虫菊酯农药微生物降解基因 | 第16-17页 |
| 7 蛋白质组学在生物降解中的应用 | 第17页 |
| 8 代谢组学在生物降解中的应用 | 第17-18页 |
| 9 微生物生物修复存在的问题 | 第18-19页 |
| 10 研究的目的和意义 | 第19-20页 |
| 第二章 氟氯氰菊酯降解菌FLQ-11-1的分离鉴定 | 第20-28页 |
| 1 材料与方法 | 第20-24页 |
| 1.1 材料 | 第20-21页 |
| 1.1.1 试剂 | 第20-21页 |
| 1.1.2 土壤样品 | 第21页 |
| 1.1.3 培养基 | 第21页 |
| 1.1.4 仪器 | 第21页 |
| 1.2 方法 | 第21-24页 |
| 1.2.1 富集与分离 | 第21页 |
| 1.2.2 菌株鉴定 | 第21-23页 |
| 1.2.3 培养液中氟氯氰菊酯含量的检测 | 第23-24页 |
| 2 结果与分析 | 第24-27页 |
| 2.1 氟氯氰菊酯降解菌FLQ-11-1的分离 | 第24页 |
| 2.2 菌株FLQ-11-1的形态特性 | 第24-25页 |
| 2.3 菌株FLQ-11-1的生理生化 | 第25页 |
| 2.4 菌株FLQ-11-1的16S rRNA分子鉴定 | 第25-26页 |
| 2.5 菌株FLQ-11-1的Sherlock MIS脂肪酸鉴定 | 第26-27页 |
| 3 讨论 | 第27-28页 |
| 第三章 降解菌的FLQ-11-1降解特性 | 第28-36页 |
| 1 材料与方法 | 第28-30页 |
| 1.1 材料 | 第28-30页 |
| 1.1.1 菌株 | 第28页 |
| 1.1.2 培养基 | 第28页 |
| 1.1.3 降解菌降解特性 | 第28-29页 |
| 1.1.4 降解菌降解条件响应面优化 | 第29页 |
| 1.1.5 降解菌的降解谱 | 第29-30页 |
| 1.1.6 培养液中农药含量的检测 | 第30页 |
| 2 结果与分析 | 第30-34页 |
| 2.1 接种量对FLQ-11-1降解氟氯氰菊酯的影响 | 第30页 |
| 2.2 温度对菌株FLQ-11-1降解氟氯氰菊酯的影响 | 第30-31页 |
| 2.3 pH值对菌株FLQ-11-1降解氟氯氰菊酯的影响 | 第31页 |
| 2.4 响应面优化分析 | 第31-34页 |
| 2.5 降解菌对不同拟除虫菊酯的降解 | 第34页 |
| 3 讨论 | 第34-36页 |
| 第四章 降解机理研究-降解菌FLQ-11-1对氟氯氰菊酯代谢途径 | 第36-43页 |
| 1 材料与方法 | 第36-38页 |
| 1.1 菌株和培养基 | 第36页 |
| 1.2 氟氯氰菊酯降解实验及代谢产物的收集 | 第36-37页 |
| 1.3 代谢产物的提取方法优化 | 第37页 |
| 1.4 降解条件的检测 | 第37-38页 |
| 2 结果与分析 | 第38-42页 |
| 2.1 提取条件的优化 | 第38页 |
| 2.2 降解代谢物的总离子图谱及质谱鉴定 | 第38-40页 |
| 2.3 代谢产物的动态分析及代谢途径的推测 | 第40-42页 |
| 3 讨论 | 第42-43页 |
| 第五章 降解机理研究-菌株FLQ-11-1降解氟氯氰菊酯的蛋白表达图谱 | 第43-65页 |
| 1 材料与方法 | 第43-48页 |
| 1.1 菌株 | 第43页 |
| 1.2 试剂与仪器 | 第43-44页 |
| 1.3 方法 | 第44-48页 |
| 1.3.1 菌株培养方法 | 第44页 |
| 1.3.2 菌株FLQ-11-1菌体蛋白破碎条件优化 | 第44页 |
| 1.3.3 菌株FLQ-11-1全蛋白提取 | 第44-45页 |
| 1.3.4 等电聚焦 | 第45-46页 |
| 1.3.5 胶条平衡及第二向SDS-PAGE电泳 | 第46页 |
| 1.3.6 胶体考马斯亮蓝染色 | 第46-47页 |
| 1.3.7 凝胶扫描 | 第47页 |
| 1.3.8 蛋白点的酶解 | 第47-48页 |
| 1.3.9 蛋白质质谱鉴定和数据检索 | 第48页 |
| 1.4 差异蛋白质的层次聚类分析 | 第48页 |
| 1.5 Pathway分析 | 第48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-63页 |
| 2.1 细胞破碎方法优化 | 第48-49页 |
| 2.2 菌株FLQ-11-1降解过程分泌蛋白的双向电泳分析 | 第49-50页 |
| 2.3 差异蛋白点的PMF鉴定 | 第50-53页 |
| 2.4 差异蛋白质层次聚类分析 | 第53-54页 |
| 2.5 Pathway分析 | 第54-57页 |
| 2.6 几个差异蛋白点的肽质量指纹图谱分析 | 第57-63页 |
| 2.6.1 蛋白点499的PMF分析结果 | 第57-59页 |
| 2.6.2 蛋白点617的PMF的分析结果 | 第59-61页 |
| 2.6.3 蛋白点458的PMF分析结果 | 第61-63页 |
| 3 讨论 | 第63-65页 |
| 3.1 菌体蛋白提取方法 | 第63页 |
| 3.2 与氟氯氰菊酯降解相关的蛋白鉴定 | 第63-65页 |
| 第六章 小结和展望 | 第65-67页 |
| 1 小结 | 第65页 |
| 2 展望 | 第65-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 附录 | 第75-95页 |
| 致谢 | 第95-96页 |
| 在读期间论文发表情况 | 第96页 |
