| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 前言 | 第15-33页 |
| 1. 脊椎动物类固醇激素简介 | 第15-16页 |
| 2. 软体动物性类固醇激素研究进展 | 第16-24页 |
| 2.1 性类固醇激素在软体动物生殖过程中的潜在作用 | 第18-20页 |
| 2.1.1 性别决定和性别分化 | 第18-19页 |
| 2.1.2 配子发生 | 第19-20页 |
| 2.1.3 配子排放 | 第20页 |
| 2.2 性类固醇激素的作用机制 | 第20-22页 |
| 2.3 软体动物性类固醇激素合成与代谢途径 | 第22-24页 |
| 3. 17β-羟类固醇脱氢酶 | 第24-31页 |
| 3.1 哺乳动物 17β-羟类固醇脱氢酶结构与功能 | 第24-28页 |
| 3.2 低等动物 17β-羟类固醇脱氢酶研究进展 | 第28-29页 |
| 3.3 17β-羟类固醇脱氢酶 8 研究进展 | 第29-31页 |
| 4. 研究目的及意义 | 第31-33页 |
| 第二章 性类固醇激素在栉孔扇贝生殖过程中的作用 | 第33-51页 |
| 1. 材料与方法 | 第33-37页 |
| 1.1 材料 | 第33-34页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第33-34页 |
| 1.1.2 实验仪器 | 第34页 |
| 1.1.3 试剂及耗材 | 第34页 |
| 1.2 方法 | 第34-37页 |
| 1.2.1 性腺组织学观察 | 第34-35页 |
| 1.2.2 性腺性类固醇激素水平检测 | 第35-36页 |
| 1.2.3 数据统计分析 | 第36-37页 |
| 2. 结果 | 第37-46页 |
| 2.1 水温变化 | 第37页 |
| 2.2 性腺指数变化 | 第37-38页 |
| 2.3 性腺发育和配子发生组织学特征 | 第38-41页 |
| 2.4 性腺发育阶段频率分布 | 第41-42页 |
| 2.5 性腺激素水平变化 | 第42-44页 |
| 2.6 睾酮/雌二醇（T/E2）比值变化 | 第44-45页 |
| 2.7 性腺激素水平与配子发生过程的相关性 | 第45-46页 |
| 3. 讨论 | 第46-50页 |
| 3.1 配子发生特征及性腺分期 | 第46页 |
| 3.2 性激素在生殖过程中的潜在作用 | 第46-50页 |
| 3.2.1 激素水平的性别二态性 | 第46-47页 |
| 3.2.2 在性别决定和性别分化过程中的作用 | 第47-48页 |
| 3.2.3 在配子发生过程中的潜在作用 | 第48-49页 |
| 3.2.4 在配子排放过程中的潜在作用 | 第49页 |
| 3.2.5 潜在的芳香化酶活性 | 第49-50页 |
| 4. 小结 | 第50-51页 |
| 第三章 栉孔扇贝 17β-羟类固醇脱氢酶 8 克隆及序列特征 | 第51-71页 |
| 1. 材料方法 | 第51-61页 |
| 1.1 材料 | 第51-52页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第51页 |
| 1.1.2 实验仪器 | 第51页 |
| 1.1.3 试剂及耗材 | 第51-52页 |
| 1.2 方法 | 第52-61页 |
| 1.2.1 总 RNA 提取 | 第52-53页 |
| 1.2.2 RACE-ready cDNA 第一链合成 | 第53-55页 |
| 1.2.3 全长 cDNA 克隆 | 第55-56页 |
| 1.2.4 生物信息学分析 | 第56-57页 |
| 1.2.5 重组蛋白的原核表达、纯化及复性 | 第57-60页 |
| 1.2.6 重组蛋白体外酶活性测定 | 第60-61页 |
| 2. 结果 | 第61-69页 |
| 2.1 17β-HSD8 全长 cDNA 及其序列特征 | 第61-63页 |
| 2.2 17β-HSD8 多序列比对及系统进化分析 | 第63-65页 |
| 2.3 17β-HSD8 蛋白生物信息学分析 | 第65-66页 |
| 2.4 17β-HSD8 重组蛋白的原核表达、纯化及复性 | 第66-68页 |
| 2.5 17β-HSD8 重组蛋白体外催化活性 | 第68-69页 |
| 3. 讨论 | 第69-70页 |
| 3.1 栉孔扇贝 17β-HSD8 序列特征 | 第69页 |
| 3.2 栉孔扇贝 17β-HSD8 的催化活性 | 第69-70页 |
| 4. 小结 | 第70-71页 |
| 第四章 栉孔扇贝 17β-羟类固醇脱氢酶 8 的表达及功能分析 | 第71-96页 |
| 1. 材料方法 | 第71-83页 |
| 1.1 材料 | 第71-74页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第71-72页 |
| 1.1.2 实验仪器 | 第72页 |
| 1.1.3 试剂及耗材 | 第72-74页 |
| 1.2 方法 | 第74-83页 |
| 1.2.1 总 RNA 提取 | 第74页 |
| 1.2.2 cDNA 第一链合成 | 第74页 |
| 1.2.3 半定量 RT-PCR | 第74-75页 |
| 1.2.4 实时荧光定量 PCR（qRT-PCR） | 第75-76页 |
| 1.2.5 原位杂交 | 第76-80页 |
| 1.2.6 Western blot | 第80-82页 |
| 1.2.7 免疫组化 | 第82页 |
| 1.2.8 数据统计分析 | 第82-83页 |
| 2. 结果 | 第83-91页 |
| 2.1 17β-HSD8 基因 mRNA 组织表达特征 | 第83页 |
| 2.2 栉孔扇贝 17β-HSD8 性腺发育过程中的时间表达特征 | 第83-85页 |
| 2.2.1 17β-HSD8 mRNA 相对表达量 | 第83-85页 |
| 2.2.2 17β-HSD8 蛋白表达量 | 第85页 |
| 2.3 栉孔扇贝 17β-HSD8 在性腺中的空间表达特征 | 第85-88页 |
| 2.3.1 17β-HSD8 mRNA 细胞学定位 | 第85-87页 |
| 2.3.2 17β-HSD8 蛋白的细胞学定位 | 第87-88页 |
| 2.4 栉孔扇贝早期发育过程中 17β-HSD8 mRNA 的表达图式 | 第88-91页 |
| 2.4.1 17β-HSD8 mRNA 相对表达量 | 第88-89页 |
| 2.4.2 17β-HSD8 mRNA 空间表达 | 第89-91页 |
| 3. 讨论 | 第91-94页 |
| 3.1 17β-HSD8 参与调控雌二醇介导的配子发生过程 | 第91-92页 |
| 3.2 17β-HSD8 在配子发生过程中的生理功能 | 第92页 |
| 3.3 17β-HSD8 在早期发育过程中的潜在作用 | 第92-93页 |
| 3.4 潜在的 17β-HSD8 转录调控机制 | 第93-94页 |
| 3.5 17β-HSD8 在脂质代谢途径中的潜在作用 | 第94页 |
| 4. 小结 | 第94-96页 |
| 总结 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-119页 |
| 致谢 | 第119-120页 |
| 个人简历 | 第120-121页 |
| 学术成果 | 第121-123页 |
