| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-10页 |
| 第1章 引言 | 第10-12页 |
| 第2章 材料与方法 | 第12-21页 |
| 2.1 实验材料 | 第12-13页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第12页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第12-13页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第13页 |
| 2.2 实验方法 | 第13-21页 |
| 2.2.1 器材的灭菌处理 | 第13页 |
| 2.2.2 相关液体的配制 | 第13-14页 |
| 2.2.3 大鼠 MSCs 分离、扩增培养及鉴定 | 第14-15页 |
| 2.2.4 大鼠 miR-1 慢病毒过表达载体构建与包装 | 第15-17页 |
| 2.2.5 miRNA-1 转染大鼠 MSCs | 第17页 |
| 2.2.6 大鼠心肌梗死模型的建立 | 第17页 |
| 2.2.7 实验动物分组及 BMSCs 移植 | 第17-18页 |
| 2.2.8 彩色多普勒超声心动图检测心脏结构和功能 | 第18页 |
| 2.2.9 留取标本及处理： | 第18页 |
| 2.2.10 HE 染色观察心肌组织病理学 | 第18-19页 |
| 2.2.11 血清 VEGF 浓度测定（ELISA） | 第19页 |
| 2.2.12 毛细血管密度的测定 | 第19页 |
| 2.2.13 肌钙蛋白 T、连接蛋白 Cx43 免疫荧光 | 第19-20页 |
| 2.2.14 统计学处理 | 第20-21页 |
| 第3章 结果 | 第21-33页 |
| 3.1 BMSCs 形态学变化及鉴定 | 第21-22页 |
| 3.1.1 BMSCs 形态学变化 | 第21页 |
| 3.1.2 大鼠 BMSCs 鉴定 | 第21-22页 |
| 3.2 miR-1 过表达慢病毒载体的构建 | 第22-23页 |
| 3.2.1 酶切获取目的基因 | 第22页 |
| 3.2.2 重组慢病毒载体构建及鉴定 | 第22-23页 |
| 3.2.3 miR-1 慢病毒包装及滴度检测 | 第23页 |
| 3.3 慢病毒感染 BMSCs 结果 | 第23-24页 |
| 3.3.1 转染效率 | 第23-24页 |
| 3.3.2 miR-1 过表达慢病毒感染大鼠 MSCs 效果： | 第24页 |
| 3.4 心肌梗死模型的建立 | 第24-25页 |
| 3.5 超声心动图评价心脏结构和功能 | 第25-28页 |
| 3.6 左室质量指数测算 | 第28页 |
| 3.7 心肌组织病理学观察 | 第28-29页 |
| 3.8 ELISA 测定血清 VEGF 浓度 | 第29-30页 |
| 3.9 毛细血管密度检测 | 第30-31页 |
| 3.10 肌钙蛋白 T、连接蛋白 Cx43 免疫荧光检测 | 第31-33页 |
| 第4章 讨论 | 第33-39页 |
| 第5章 结论与展望 | 第39-40页 |
| 5.1 结论 | 第39页 |
| 5.2 展望 | 第39-40页 |
| 致谢 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-45页 |
| 综述 | 第45-52页 |
| 参考文献 | 第49-52页 |
