| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 前言 | 第12-23页 |
| 1.1 微生物转化甾体化合物概述 | 第12-15页 |
| 1.1.1 甾体化合物 | 第12-13页 |
| 1.1.2 微生物转化甾体化合物的简介 | 第13-14页 |
| 1.1.3 微生物转化甾体化合物的反应类型 | 第14页 |
| 1.1.4 微生物转化甾体化合物的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.2 甾体化合物的微生物C11α-羟化反应 | 第15-18页 |
| 1.2.1 甾体化合物的微生物羟化反应 | 第15-16页 |
| 1.2.2 甾体化合物的微生物羟化反应机理 | 第16-17页 |
| 1.2.3 甾体化合物的微生物C11α-羟化反应研究进展 | 第17-18页 |
| 1.3 微生物对雄烯二酮的羟化反应的研究进展 | 第18-21页 |
| 1.4 本课题立题依据和研究思路 | 第21-23页 |
| 第二章 自筛菌种对雄烯二酮的生物转化研究 | 第23-31页 |
| 2.1 引言 | 第23页 |
| 2.2 菌种的筛选与鉴定 | 第23-25页 |
| 2.2.1 初筛 | 第23-24页 |
| 2.2.2 复筛 | 第24页 |
| 2.2.3 菌种鉴定 | 第24-25页 |
| 2.3 自筛菌种对雄烯二酮及雄二烯二酮的转化研究 | 第25-30页 |
| 2.3.1 泡盛曲霉MH-18转化雄烯二酮 | 第25-28页 |
| 2.3.2 MH-14转化雄烯二酮 | 第28页 |
| 2.3.3 MH-19转化雄烯二酮 | 第28-29页 |
| 2.3.4 泡盛曲霉MH-18转化雄二烯二酮 | 第29-30页 |
| 2.4 小结 | 第30-31页 |
| 第三章 泡盛曲霉MH-18对雄烯二酮11α-羟基化的工艺研究 | 第31-49页 |
| 3.1 引言 | 第31页 |
| 3.2 泡盛曲霉MH-18生长曲线的测定 | 第31-32页 |
| 3.3 泡盛曲霉MH-18的培养条件对雄烯二酮11α-羟基化的影响 | 第32-43页 |
| 3.3.1 碳源种类的影响 | 第32页 |
| 3.3.2 碳源浓度的影响 | 第32-33页 |
| 3.3.3 氮源种类的影响 | 第33-34页 |
| 3.3.4 氮源浓度的影响 | 第34-35页 |
| 3.3.5 无机盐种类的影响 | 第35页 |
| 3.3.6 无机盐浓度的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.7 初始pH值的影响 | 第36-37页 |
| 3.3.8 培养基组成的响应面试验优化 | 第37-43页 |
| 3.4 泡盛曲霉MH-18的转化条件对雄烯二酮11α-羟基化的影响 | 第43-47页 |
| 3.4.1 转化温度的影响 | 第43-44页 |
| 3.4.2 转速的影响 | 第44页 |
| 3.4.3 装液量的影响 | 第44-45页 |
| 3.4.4 助溶剂种类的影响 | 第45-46页 |
| 3.4.5 底物终浓度的影响 | 第46-47页 |
| 3.4.6 转化时间的影响 | 第47页 |
| 3.4.7 转化工艺优化的确证 | 第47页 |
| 3.5 小结 | 第47-49页 |
| 第四章 实验部分 | 第49-65页 |
| 4.1 菌种 | 第49页 |
| 4.2 培养基 | 第49页 |
| 4.3 实验试剂 | 第49-51页 |
| 4.4 仪器设备 | 第51页 |
| 4.5 实验方法 | 第51-65页 |
| 4.5.1 菌种的筛选与鉴定 | 第51-55页 |
| 4.5.2 自筛菌种对雄烯二酮及雄二烯二酮的转化研究 | 第55-58页 |
| 4.5.3 泡盛曲霉MH-18生长曲线的测定 | 第58页 |
| 4.5.4 泡盛曲霉MH-18的培养条件对雄烯二酮11α-羟基化的影响 | 第58-60页 |
| 4.5.5 泡盛曲霉MH-18的转化条件对雄烯二酮11α-羟基化的影响 | 第60-62页 |
| 4.5.6 高效液相色谱法测定转化率 | 第62-65页 |
| 结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-71页 |
| 附图 | 第71-79页 |
| 个人简介 | 第79-80页 |
| 致谢 | 第80页 |
